Informacja

Co to za żeberka?

Co to za żeberka?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

W moim ogrodzie strefy 5 USDA mam roślinę, która wydaje się być z rodzaju ribes.

Detale:

  • Lokalizacja znajduje się na wschód od Toronto (Ontario, Kanada).
  • Roślina obecnie kwitnie (dzisiaj jest 18 maja 2019 r.).
  • Ma około 4 stóp wysokości.
  • Roślina kwitnie co roku, ale nie zawiązuje owoców (nie jest samoowocna).

Więcej zdjęć tutaj:

  1. https://i.stack.imgur.com/coEp5.jpg">https://i.stack.imgur.com/wv0TA.jpg">https://i.stack.imgur.com/pFmtk.jpg" >https://i.stack.imgur.com/KvjGe.jpg">

    Myślę że to Żeberka amerykańskie lub dzika czarna porzeczka.

    Opieram to na stronie 306 z Poradnik Newcomb's Wildflower, doskonałe źródło dla wschodnich Stanów Zjednoczonych i niektórych Kanady. Na tej stronie mamy dwie główne opcje:

    1. Podstawa kwiatów kłująca lub szczeciniasta… lub

    2. Podstawa z kwiatów nie kłująca ani szczeciniasta…

    Twój świetny zdjęcia sugerują, że twój okaz należy do kategorii 2.

    Stamtąd mamy:

    a. Kwiaty pojedyncze lub 2-3 w gronie; gałęzie z kilkoma cierniami. lub

    b. Kwiaty 5 lub więcej w gronach.

    Wygląda na to, że Twój okaz ma sporo kwiatów, więc w kategorii 2b mamy do wyboru Żeberka amerykańskie:

    Kwiaty białawe lub żółtawe, dłuższe niż szerokie (i owoce czarne, jak sądzę później sprawdzisz),

    lub Ribes sativum:

    Kwiaty zielonkawe, szersze niż długie (i owoce czerwone).

    Kolor w zakresie biało-zielono-żółty jest nieco subiektywny, ale twoje kwiaty wyglądają na dłuższe niż szerokie, stąd Żeberka amerykańskie.

    Oczywiście mając to na uwadze, możesz ponownie sprawdzić fabrykę i nieco ją udoskonalić.


    Rubus

    Maliny, jeżyny i jeżyny są powszechnymi, szeroko rozpowszechnionymi przedstawicielami rodzaju. Większość z tych roślin ma zdrewniałe łodygi z kolcami, takimi jak kolce róż, włosie i końcówki gruczołów, które są również powszechne w tym rodzaju. ten Rubus owoc, czasami nazywany owocem jeżyny, jest skupiskiem pestek. Termin „owoc trzciny” (lub „owoc trzciny”) lub „jagoda trzciny cukrowej” (lub „malina trzcinowa”) odnosi się do każdego Rubus gatunki lub hybrydy, które są powszechnie uprawiane na podporach, takich jak druty lub laski, w tym maliny, jeżyny i hybrydy, takie jak jeżyna, borówka, marionberry i tayberry. [5] Łodygi takich roślin są również określane jako pędy.


    Struktura żebra

    Istnieją dwie klasyfikacje żeber – nietypowe i typowe. Typowe żebra mają uogólnioną strukturę, podczas gdy nietypowe żebra mają odmiany tej struktury.

    Typowe żeberka

    Typowe żebro składa się z głowy, szyi i tułowia:

    ten głowa ma kształt klina i ma dwie ścianki stawowe oddzielone klinem kostnym. Jedna fasetka łączy się z odpowiednimi numerycznie kręgami, a druga łączy się z kręgami powyżej.

    ten szyja nie zawiera wypukłości kostnych, a jedynie łączy głowę z ciałem. Tam, gdzie szyja styka się z ciałem, znajduje się chropowaty guzek z fasetką do przegubu z wyrostkiem poprzecznym odpowiednich kręgów.

    Ciało, lub wał żebra jest płaskie i zakrzywione. Na wewnętrznej powierzchni trzonu znajduje się rowek do zaopatrzenia nerwowo-naczyniowego klatki piersiowej, chroniący naczynia i nerwy przed uszkodzeniem.

    Ryc. 2 – Kościste punkty orientacyjne typowego żebra.

    Nietypowe żeberka

    Żebra 1, 2, 10, 11 i 12 można określić jako „nietypowe” – mają cechy, które nie są wspólne dla wszystkich żeber.

    Żebro 1 jest krótsza i szersza niż pozostałe żebra. Ma tylko jedną fasetę na głowie do artykulacji z odpowiednimi kręgami (nie ma nad nim kręgu piersiowego). Górna powierzchnia jest zaznaczona dwoma bruzdami, które tworzą miejsce dla naczyń podobojczykowych.

    Żebro 2 jest cieńsza i dłuższa niż żebro 1 i ma jak zwykle dwie fasetki stawowe na głowie. Na górnej powierzchni ma szorstką powierzchnię, z której wywodzi się mięsień zębaty przedni.

    Żebro 10 ma tylko jeden aspekt – artykulację z odpowiadającymi jej numerycznie kręgami.

    Żeberka 11 oraz 12 nie mają szyi i zawierają tylko jedną fasetę, która służy do artykulacji z odpowiadającymi im kręgami.


    Analiza, identyfikacja i oznaczanie ilościowe antocyjanów w sokach owocowych

    Tânia G. Albuquerque , . Helena S. Costa , w Soki owocowe , 2018

    34.5.11 Czerwona porzeczka

    Czerwona porzeczka lub czerwona porzeczka należy do rodzaju Żeberka z rodziny agrestowej i pochodzi z Europy Zachodniej, ale obecnie jest szeroko rozpowszechniony na całym świecie. Przy regularnym spożywaniu czerwone porzeczki wiązały się ze spadkiem zapadalności na wiele chorób przewlekłych, a mianowicie choroby układu krążenia, cukrzycę i nowotwory (Zdunić i in., 2016). W literaturze dokonano analizy porównawczej zawartości antocyjanów wśród różnych odmian czerwonych porzeczek (Żeberka rubrum L.) i stwierdzono znaczne różnice, zwłaszcza w zakresie kwot (Stój i in., 2006). Natomiast jeśli chodzi o profil antocyjanów, dla wszystkich wybranych odmian soków z czerwonej porzeczki, najliczniej występującym antocyjanem był cyjanidyno-3-rutynozyd, którego ilości wahały się od 27,4 do 77 mg/100 ml (Stój et al., 2006).


    Zwalczanie chorób wirusowych roślin

    Robert R. Martin , Ioannis E. Tzanetakis , w Postępy w badaniach nad wirusami , 2015

    1. Wstęp

    Termin jagoda (małe owoce) odnosi się przede wszystkim do rodzajów Fragaria (truskawka), Rubus (jeżyny, maliny i ich hybrydy), Vaccinium (borówki i żurawiny), Żeberka (porzeczki i agrest) oraz Sambucus (czarny bez). Tradycyjnie uprawy jagodowe były zbierane na wolności u zarania gatunku ludzkiego i dopiero od niedawna stały się uprawami rolniczymi, zwłaszcza po wynalezieniu nowoczesnej truskawki (F. x ananassa). W krótkim czasie i ze względu na ich coraz większą popularność wśród konsumentów, uprawy jagodowe zostały opracowane tak, aby rosnąć na całym świecie, od subtropikalnych do subarktycznych. Duża ekspansja produkcji i środowisk, w których uprawiane są te rośliny, wraz z szybkimi zmianami genotypów uprawianych komercyjnie, zaowocowała bardzo zróżnicowanym wirosomem w uprawach jagodowych (Martin, MacFarlane i in., 2013 Martin, Peres, & Whidden, 2013 Martin, Polasock i Tzanetakis, 2012 Martin i Tzanetakis, 2006). Te zmiany i rozwój nowych technologii pozwalających na szybkie odkrywanie nowych wirusów doprowadziły do ​​znacznego wzrostu liczby znanych wirusów jagodowych, która wzrosła ponad dwukrotnie w ciągu ostatnich 20 lat. Liczba nowych odkryć wciąż wzrasta, ponieważ w każdym z ostatnich 3 lat zidentyfikowano ponad osiem wirusów jagodowych (Martin et al., 2012 Martin, MacFarlane et al., 2013 Martin, Peres et al., 2013 Martin et al. , niepublikowane Tzanetakis i in., niepublikowane). Komunikat ten ma na celu przedstawienie ogólnego przeglądu, w jaki sposób można wykorzystać podstawową wiedzę na temat wirusów jagodowych do skutecznej kontroli wirusów podczas procesu rozmnażania i zakładania w terenie.

    Istnieje ponad 80 gatunków w 30 rodzajach wirusów, o których wiadomo, że infekują główne uprawy jagodowe (tu przedstawimy tylko te, o których informowano w recenzowanych publikacjach z maja 2014 r.). Większość wirusów zidentyfikowanych przed latami 90. jest dobrze zbadana na poziomie molekularnym i biologicznym, podczas gdy nowo zidentyfikowane wirusy są charakteryzowane przede wszystkim na poziomie molekularnym. Doprowadziło to do luk w wiedzy, którymi należy się zająć. Na potrzeby niniejszego komunikatu przedstawimy strategie kontroli tych mniej zbadanych wirusów w oparciu o ich umiejscowienie taksonomiczne i zgromadzoną wiedzę biologiczną na temat blisko spokrewnionych wirusów. Na podstawie danych molekularnych należy rozważyć najlepsze przypuszczenia potencjalnych wektorów, od mączlików przez roztocza eriophyid do grzybów. Liczba taksonów wektorowych na danym obszarze może być taka, że ​​kontrola wszystkich wektorów jest niewykonalna. Ogólnie rzecz biorąc, obszary z tradycją produkcji jagód mają określoną grupę wirusów. W większości przypadków istnieje wiedza fachowa na temat wirusów/wektorów i ich kontroli, podczas gdy nowe obszary produkcyjne mają zwykle szerszą gamę wirusów, z których wiele dopiero niedawno odkryto. W poszczególnych tabelach przedstawiono listę wirusów infekujących każdą z głównych upraw jagodowych, sposób ich przenoszenia oraz zasięg geograficzny (jeśli jest znany). Mszyce są głównymi nosicielami wirusów dla wszystkich upraw jagodowych. Występują obficie w tradycyjnych obszarach produkcyjnych w regionach o klimacie umiarkowanym na całym świecie i zaledwie kilka lat temu uważano je za jedyny wektor niepokojący dla większości obszarów produkcyjnych. W większości upraw główne gatunki mszyc kolonizujących uprawę są również głównymi wektorami, zdolnymi do przenoszenia szeregu wirusów, które mają tendencję do synergistycznego działania wywołującego choroby, jak w przypadku spadku truskawek lub mozaiki malin (Martin & Tzanetakis, 2006 Quito- Avila, Lightle i Martin, 2014). Mimo to istnieją karmniki oportunistyczne, które mogą przenosić się bez kolonizacji roślin (Myzus ornatus Lowery, Bernardy, Deyoung i francuski, 2008). Gdy gatunek mszycy jest specyficzny dla danej uprawy, zwalczanie można osiągnąć za pomocą opryskiwania chemicznego lub nawet skuteczniej, w przypadku truskawek z okresami wolnymi od upraw, co jest praktyką stosowaną w szkółkach, które nie sąsiadują z polami komercyjnymi.

    Wirusy przenoszone przez nicienie mogą powodować znaczne straty, a nawet śmierć roślin (Martin, MacFarlane i in., 2013 Martin, Peres i in., 2013 Martin i in., 2012 Martin & Tzanetakis, 2006). Główne wirusy infekujące uprawy jagodowe należą do rodzaju Nepowirus i nieprzypisane Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki. Jednym z głównych zastrzeżeń dotyczących członków tej grupy jest ich szeroka gama żywicieli, która obejmuje kilka pospolitych chwastów obecnych na polach jagodowych. Ponieważ ruch nicieni jest ograniczony do mniej niż 2 m/rok, udało się je skutecznie kontrolować przy użyciu silnych nicieni, takich jak bromek metylu. Wraz ze stopniowym wycofywaniem bardziej wydajnych nicieni, ta grupa wirusów może ponownie się pojawić, zwłaszcza na obszarach, gdzie wektory nicieni są endemiczne.

    Wirusy przenoszone przez pyłki i nasiona (PSTV) stanowią najtrudniejszą grupę, jeśli chodzi o kontrolę, ponieważ jedyną realną metodą zwalczania jest unikanie. W wielu przypadkach PSTV powodują znaczne straty w pojedynczych lub mieszanych infekcjach, podczas gdy kilka z nich infekuje wiele upraw jagodowych (MacDonald, Martin, & Bristow, 1991 Martin, MacFarlane i in., 2013 Martin, Peres i in., 2013 Pallas i in. al., 2012 ). Niektóre z PSTV nie mają aktywnego wektora i mogą poruszać się biernie pod wpływem wiatru i zapylających stawonogi, takich jak pszczoły, wciornastki (Sdoodee & Teakle, 1987) i roztocza, podczas gdy inne mogą mieć wektory owadów lub nicieni. ich podstawowe wektory mogą znacznie ograniczyć rozprzestrzenianie się.

    Mączliki zostały zidentyfikowane jako wektory wirusowe w uprawach jagodowych dopiero niedawno, chociaż pojawiły się choroby, po raz pierwszy zgłoszone w latach 50. XX wieku, które okazały się być wywoływane przez wirusy przenoszone przez mączliki (Tzanetakis i in., 2004 Tzanetakis, Wintermantel, & Martin , 2003 ). Pojawienie się tej grupy wirusów jako głównego czynnika ograniczającego produkcję wynika przede wszystkim z ekspansji produkcji jagód w strefie podzwrotnikowej i rozszerzenia zasięgu geograficznego mączlików na regiony o klimacie umiarkowanym na całym świecie. Mimo to liczba wirusów przenoszonych przez mączliki jest nadal ograniczona i obejmuje tylko gatunki, które infekują truskawki i jeżyny. We wszystkich przypadkach wirusy te nie powodują objawów o dużym znaczeniu w pojedynczych infekcjach, ale działają synergistycznie z innymi wirusami w infekcjach mieszanych, powodując szkodliwe objawy, które mogą nawet prowadzić do śmierci rośliny (Martin & Tzanetakis, 2013 Susaimuthu, Tzanetakis, Gergerich, Kim, & Martin, 2008 Susaimuthu, Tzanetakis, Gergerich, & Martin, 2008). Powinno to dotyczyć programów certyfikacji i systemów żłobków, w których ocena choroby często opiera się na obserwacjach wizualnych. W przypadku wielu wirusów roślin jagodowych, rośliny zakażone jednym lub dwoma wirusami mogą być bezobjawowe w roślinach szkółkarskich i przechodzą inspekcje wizualne, ale po przeniesieniu na pola produkcyjne i zarażeniu dodatkowymi wirusami mogą szybko zanikać (Martin i amp Tzanetakis, 2013).

    W uprawach jagodowych odkryto niedawno roztocza eriophyid wektorujące wirusy, chociaż o niektórych chorobach, z którymi są one związane, donoszono od początku XX wieku (Jones, Gordon i amp Jennings, 1984). Brak wiedzy na temat biologii tych wektorów i brak ogólnoustrojowych środków łagodzących sprawia, że ​​kontrola wektorów jest wyzwaniem. Do tej pory większość wirusów przenoszonych przez roztocza jagodowe należy do rodzaju Emarawirus ( Hassan, Keller, Martin, Sabanadzovic, & Tzanetakis, 2013 McGavin, Mitchell, Cock, Wright, & MacFarlane, 2012 ), wirusy, które wydają się być zlokalizowane w miejscach żerowania roztoczy, ale istnieją przesłanki, że kilka nowych infekujących jagody systemowe Wirusy RNA są również przenoszone przez roztocza i biorą udział w ważnych chorobach, głównie jako część kompleksów wirusowych (Sabanadzovic, Abou Ghanem-Sabanadzovic, & Tzanetakis, 2011). Głównym wyjątkiem jest Wirus rewersji czarnej porzeczki (BRV), który taksonomicznie należy do rodzaju Nepowirus ale jest przenoszony przez roztocza żółciowego czarnej porzeczki (Susi, 2004). BRV stanowi przykład potrzeby eksperymentalnej weryfikacji wektora wirusowego, ponieważ przewidywania oparte na danych molekularnych i taksonomii mogą być mylące.

    Skoczki to kolejna grupa, którą ostatnio zidentyfikowano jako potencjalne wektory wirusowe dla upraw jagodowych. Do tej pory w tym rodzaju są co najmniej cztery wirusy jeżyn Marafiwirus ( Sabanadzovic & Abou Ghanem-Sabanadzovic, 2009 Sabanadzovic, Ghanem-Sabanadzovic, & Gorbalenya, 2009 Sabanadzovic et al., niepublikowane), a inne wirusy z tego rodzaju są przenoszone przez skoczki. Badanie przeprowadzone w południowo-wschodnich Stanach Zjednoczonych zidentyfikowało około 50 gatunków skoczków na polach produkcyjnych (Johnson i wsp., niepublikowane), co wskazuje na złożone interakcje wirus/wektor, które należy wyjaśnić przed opracowaniem znaczących strategii kontroli.

    Jedynym wirusem przenoszonym przez wciornastki, o którym wiadomo, że infekuje uprawy jagodowe, jest Wirus martwiczej plamistości niecierpka (INSV), wykryty w jeżynach (Tzanetakis, Guzmán-Baeny, VanEsbroeck, Fernandez, & Μartin, 2009). Nie przeprowadzono szczegółowych prac dotyczących przenoszenia wirusa w jeżynach, które wyjaśniałyby skuteczność przenoszenia lub gatunki wciornastków, które są głównymi wektorami wirusa w jeżynach. Jednak nadmierna liczba wciornastków znaleziona na kilku polach i niska liczba roślin zakażonych INSV wskazują na raczej nieefektywne przenoszenie, prawdopodobnie z powodu składu wciornastków na polach jeżyn lub obecności zróżnicowanej flory na wielu polach jeżyn w południowo-wschodnich Stanach Zjednoczonych.

    Niedawno do listy wektorów wirusa jagodowego dodano nową grupę owadów. Po odkryciu Wirus związany z prążkowaniem żył jeżynowych (BVBaV Thekke-Veetil et al., 2013), członek rodzaju Ampelowirus, przeprowadzono eksperymenty z wełnowcami, które kolonizują rośliny i pomyślnie zademonstrowały transmisję (Sabanadzovic i wsp., niepublikowane). Podobnie jak w przypadku kilku wirusów jagodowych, BVBaV nie wydaje się powodować objawów w pojedynczych infekcjach, ale często występuje w infekcjach mieszanych wirusów w zamierających roślinach.

    Ostatnia grupa wirusów z jednym przedstawicielem na dotychczasowej liście wirusów jagodowych to wirusy przenoszone przez grzyby. Mozaika jagodowa to choroba, która po raz pierwszy została opisana około 60 lat temu i dopiero niedawno pojawił się wirus związany z chorobą, Wirus związany z mozaiką jagodową (BlMaV). BlMaV należy do rodzaju Ofiowirus i został wykryty we wszystkich roślinach z typowymi objawami chorobowymi (Thekke-Veetil, Ho, Keller, Martin, & Tzanetakis, 2014). Eksperymenty z transmisją są w toku i przypuszcza się, że wirus jest przenoszony przez członków rodzaju Olpidium, podobnie jak w przypadku innych członków rodzaju.


    Zawartość

    Verticillium spp. atakują bardzo duży zakres żywicieli, w tym ponad 350 gatunków warzyw, drzew owocowych, kwiatów, upraw polowych oraz drzew cienistych lub leśnych. Większość gatunków warzyw ma pewną podatność, więc ma bardzo szeroki zakres żywicieli. [1] Lista znanych hostów znajduje się na dole tej strony.

    Objawy są podobne do większości przypadków więdnięcia z kilkoma szczegółami dotyczącymi Verticillium. Samo więdnięcie jest najczęstszym objawem, z więdnięciem łodygi i liści, które występuje z powodu zablokowania tkanek naczyniowych ksylemu, a tym samym zmniejszonego przepływu wody i składników odżywczych. W małych roślinach i sadzonkach, Verticillium może szybko zabić roślinę, podczas gdy w większych, bardziej rozwiniętych roślinach nasilenie może być różne. Czasami tylko jedna strona rośliny wydaje się zainfekowana, ponieważ w tkankach naczyniowych choroba migruje głównie w górę, a nie promieniowo w łodydze. [2] Inne objawy to karłowatość, chloroza lub żółknięcie liści, martwica lub obumieranie tkanek oraz defoliacja. Po przecięciu łodygi może być widoczne przebarwienie wewnętrznych naczyń krwionośnych. [1]

    w Verticillium, objawy i skutki będą często dotyczyć tylko dolnych lub zewnętrznych części roślin lub będą zlokalizowane tylko w kilku gałęziach drzewa. W starszych roślinach infekcja może spowodować śmierć, ale często, zwłaszcza w przypadku drzew, roślina będzie w stanie wyzdrowieć lub przynajmniej dalej żyć z infekcją. Nasilenie infekcji odgrywa dużą rolę w tym, jak poważne są objawy i jak szybko się rozwijają. [1]

    Podczas Verticillium spp. są bardzo zróżnicowane, podstawowy cykl życiowy patogenu jest podobny u wszystkich gatunków, z wyjątkiem ich struktur umożliwiających przetrwanie. Struktury przetrwania różnią się w zależności od gatunku z V. albo-atrum tworzenie grzybni, V. dalie tworzenie mikrosklerocji, V. nigrescens oraz V. nubilum tworzenie chlamydospor i V. trikorpus tworząc wszystkie trzy. Podczas spoczynku na żywotność struktury spoczynkowej ma wpływ wiele czynników, takich jak chemia gleby, temperatura, nawodnienie, mikrofauna i rośliny nieżywicielskie. Zaobserwowano, że grzybnia pozostaje żywotna przez co najmniej 4 lata [3], podczas gdy mikrosklerocje obserwowano na polach obsadzonych roślinami nieżywicielskimi przez ponad 10 lat [4], a nawet 15 lat. [1] Żywotność jest zmniejszona w tych skrajnościach, ale długa żywotność tych struktur jest ważnym aspektem dla Verticillium kontrola.

    Gdy korzenie rośliny żywicielskiej zbliżają się do struktury spoczynkowej (około 2 mm), [5] wysięk korzeniowy sprzyja kiełkowaniu, a grzyby wyrastają ze struktury w kierunku rośliny. Będąc więdnącą naczyniową, będzie próbowała dostać się do układu naczyniowego wewnątrz rośliny, a zatem musi dostać się do rośliny. Naturalne rany korzeni są najłatwiejszym sposobem wejścia, a te rany występują naturalnie, nawet w zdrowych roślinach z powodu ścierania się gleby na korzeniach. Verticillium zaobserwowano również wnikanie bezpośrednio do korzeni, ale te infekcje rzadko dostają się do układu naczyniowego, szczególnie te, które wnikają przez włośniki. [6]

    Gdy patogen dostanie się do żywiciela, trafia do układu naczyniowego, a konkretnie do ksylemu. Grzyby mogą rozprzestrzeniać się w roślinie jako strzępki, ale mogą również rozprzestrzeniać się jako zarodniki. Verticillium produkują konidia na konidioforach, a gdy konidia zostaną uwolnione w ksylemie, mogą szybko skolonizować roślinę. Zaobserwowano, że konidia wędrują na wierzchołki roślin bawełny, 115 cm, 24 godziny po początkowym zaszczepieniu konidiami, więc rozprzestrzenianie się w całej roślinie może nastąpić bardzo szybko. [7] Czasami przepływ konidiów zostanie zatrzymany przez przekroje poprzeczne ksylemu i tutaj konidia będą się odradzać, a strzępki grzyba mogą pokonać barierę, a następnie wytworzyć więcej konidiów po drugiej stronie. [8]

    Silnie zarażona roślina może ulec chorobie i umrzeć. Gdy to nastąpi, Verticillium utworzy swoje struktury przetrwania, a kiedy roślina umrze, struktury przetrwania będą tam, gdzie roślina upadnie, uwalniając inokulacje do środowiska. Struktury przetrwania będą wtedy czekać na wzrost rośliny żywicielskiej w pobliżu i rozpoczną cykl od nowa.

    Poza tym, że długo utrzymuje się w glebie, Verticillium może rozprzestrzeniać się na wiele sposobów. Najczęstszym sposobem rozprzestrzeniania się na krótkie odległości jest kontakt korzeni z korzeniami w glebie. Korzenie w warunkach naturalnych często mają w sobie niewielkie uszkodzenia lub otwory, które łatwo kolonizują Verticillium z pobliskiego zainfekowanego korzenia. Wykryto konidia przenoszone drogą powietrzną i zaobserwowano pewne kolonie, ale głównie konidia mają trudności z rozwojem nad ziemią na zdrowych roślinach. [9] W nawadnianiu otwartym kanałem, V. dalie zostały znalezione w rowach nawadniających w odległości do mili od zainfekowanej uprawy.

    Bez grzybobójczego zaprawiania nasion, zakażone nasiona są łatwo transportowane, a choroba rozprzestrzenia się i Verticillium zaobserwowano, że niektóre nasiona zachowują żywotność przez co najmniej 13 miesięcy. Sadzenie porażonych sadzeniaków może być również źródłem inokulum na nowe pole. Wreszcie wykazano, że owady również przenoszą chorobę. Zaobserwowano, że wiele owadów, w tym skoczki ziemniaczane, pszczoły tnące liście i mszyce, przenosi konidia Verticillium i ponieważ te owady mogą spowodować uszkodzenie rośliny, tworząc wejście dla Verticillium, mogą pomóc w przenoszeniu choroby. [2]

    Podczas gdy więdnięcia Verticillium często mają takie same objawy jak więdnięcia Fusarium, Verticillium może przetrwać zimną pogodę i zimy znacznie lepiej niż Fusarium, który preferuje cieplejsze klimaty. Spoczynkowe struktury Verticillium są w stanie przetrwać zamrażanie, rozmrażanie, szok termiczny, odwodnienie i wiele innych czynników oraz są dość wytrzymałe i trudne do pozbycia się. Jedynym czynnikiem, którego nie tolerują dobrze, są długie okresy warunków beztlenowych (takich jak podczas powodzi). [2]

    Verticillium najlepiej rośnie między 20 a 28 stopniami Celsjusza [1], ale kiełkowanie i wzrost mogą zachodzić znacznie poniżej (lub powyżej) tych temperatur. Woda jest niezbędna do kiełkowania struktur spoczynkowych, ale nie jest tak ważna dla rozprzestrzeniania się grzyba jak w przypadku wielu innych grzybów. Chociaż nie jest to wymóg środowiskowy dla grzyba, rośliny zestresowane, często spowodowane zmianami środowiskowymi, są łatwiejsze do zaatakowania niż rośliny zdrowe, więc wszelkie warunki, które będą stresować roślinę, ale nie zaszkodzą bezpośrednio jej Verticillium będzie korzystny dla rozwoju więdnięcia Verticillium. [2]

    Verticillium więdnięcie zaczyna się jako łagodna, miejscowa infekcja, która w ciągu kilku lat będzie rosła w siłę wraz z rozwojem bardziej męskich szczepów grzyba. Jeśli nie zostanie to zlekceważone, choroba stanie się tak rozpowszechniona, że ​​uprawa będzie musiała zostać zastąpiona odpornymi odmianami lub trzeba będzie całkowicie zasadzić nową uprawę. [1]

    Kontrola Verticillium można to osiągnąć poprzez sadzenie roślin wolnych od chorób w nieskażonej glebie, sadzenie odmian odpornych i powstrzymywanie się od sadzenia upraw podatnych na obszarach, które były wielokrotnie wykorzystywane pod uprawy psiankowate. Można również zastosować fumigację gleby, przy czym chloropikryna jest szczególnie skuteczna w zmniejszaniu występowania chorób na skażonych polach.

    W pomidorach obecność etylenu na początkowych etapach infekcji hamuje rozwój choroby, podczas gdy w późniejszych stadiach rozwoju choroby ten sam hormon powoduje silniejsze więdnięcie. Dostępne są rośliny pomidora, które zostały zaprojektowane z odpornymi genami, które będą tolerować grzyba, wykazując jednocześnie znacznie mniejsze oznaki więdnięcia. [1]

    Verticillium albo-altrum, Verticilium dalie oraz V. longisporum może zimować jako melanizowana grzybnia lub mikrosklerocja w żywej roślinności lub szczątkach roślinnych. W rezultacie ważne może być oczyszczenie resztek roślinnych, aby ograniczyć rozprzestrzenianie się choroby. Verticilium dalie oraz V. longisporum są w stanie przetrwać jako mikrosklerocja w glebie do 15 lat. [1]

    Więdnięcie Verticillium występuje u wielu różnych żywicieli, ale ma podobne niszczycielskie działanie na wiele z tych roślin. Ogólnie rzecz biorąc, obniża jakość i ilość plonu, powodując przebarwienia w tkankach, zahamowanie wzrostu oraz przedwczesną defoliację i śmierć. [10] Zapasy z porażonych szkółek mogą podlegać ograniczeniom. Po zakażeniu rośliny nie ma możliwości jej wyleczenia. Więdnięcie Verticillium jest szczególnie niepokojące na obszarach o klimacie umiarkowanym i obszarach nawadnianych. Verticllium spp. może naturalnie występować w glebach leśnych, a gdy te gleby są uprawiane, patogen zakaże uprawę. [1]

    Dolina Salinas w Kalifornii miała poważne problemy z Verticillium więdnie od 1995 roku, najprawdopodobniej z powodu powodzi zimą 1995 roku. Wiele obszarów w dolinach Salinas i Pajaro nie jest w stanie uprawiać sałaty ze względu na wysoki poziom dalie Verticillium w glebie. [11] Ziemniaki uprawiane w Verticillium porażone gleby mogą mieć zmniejszoną wydajność o 30-50% w porównaniu do ziemniaków uprawianych na „czystej” glebie. Więdnięcie Verticillium spowodowało również przesunięcie w uprawie mięty pieprzowej ze Środkowego Zachodu w połowie do końca XIX wieku do zachodnich stanów, takich jak Oregon, Waszyngton i Idaho, na nowe, nieinfekowane obecnie obszary w tych stanach. [10]

    Ponowne sadzenie podatnych gatunków w miejscu usuniętej rośliny, która uległa V. albo-atrum lub V. dalia jest niewskazane ze względu na podwyższone ryzyko infekcji. Zamiast tego należy stosować odmiany odporne lub odporne. Poniższe dwie listy pokazują zarówno podatne, jak i odporne/odporne rośliny według nazwy łacińskiej. [12] [13] [14] [15] [16] [17]

    (*) wskazuje, że roślina występuje na obu listach, ponieważ różne odmiany lub odmiany różnią się odpornością.
    (#) wskazuje, że niektóre szczepy są oporne.
    (+) wskazuje na podatność na niektóre europejskie szczepy Verticillium albo-atrum.


    Lista kolorów kaptura akademickiego

    Ten Lista kolorów kaptura akademickiego pełni ważną funkcję dla twojego zestawu dyplomowych regaliów akademickich (kaptur, tam i suknia). Kolory kaptura regalia zazwyczaj obejmują cztery sekcje: materiał wierzchni, aksamitną krawędź, satynowe pole i satynową jodełkę. Za pomocą tego określa się kolor aksamitnej krawędzi oficjalna karta kolorów stopni. Ten aksamitny kolor kaptura, czasami znany jako kolory między uczelniami akademickimi Regalia, reprezentuje twój określony stopień lub dyscyplinę. Satynowe pole i szewron (kolory podszewki kaptura) reprezentują kolory Twojej uczelni. Ogólny rozmiar i kształt reprezentują rodzaj stopnia: licencjata, magistra lub doktora (z wąskim końcem stopniowo wydłużającym się wraz z wyższymi stopniami). Wreszcie kolor powłoki tkaniny po prostu pasuje do koloru tkaniny sukni dyplomowej, która zwykle jest czarna, ale czasami jest innym kolorem w zależności od instytucji przyznającej stopień. Stopnie Associate używają specjalnej osłony zamiast kaptura.

    Poniżej znajduje się oficjalna lista kolorów kapturów akademickich. Kolory twojego kaptura akademickiego są ostatecznie decyzją twojej instytucji przyznającej stopień i ciebie. Są to jednak oficjalne kolory akademickich regaliów.

    Zobacz przypis dotyczący stopni doktorskich, zasad dotyczących wielu stopni oraz określania kolorów pola i szewronu.

    Akademickie Regalia Międzyuczelniane Kolory


    Bezbarwny Kukurydza Niebiesko-Fioletowy biały Jasny niebieski
    Księgowość Rolnictwo Architektura Sztuka Sztuka w edukacji
    Bezbarwny Bezbarwny Szkarłat Zieleń Nilu Srebro
    Administracja biznesowa Edukacja biznesowa Prawo kanoniczne Pedicure Chiropraktyka
    Niebiesko-Fioletowy Pomarańczowy Bezbarwny Bezbarwny Karmazynowy
    Planowanie miasta Inżynieria lądowa Handel Nauka handlowa Komunikacja
    Rudy Jasny niebieski Nauka Złoto Niebieska północ Liliowy
    Ochrona Doradztwo i wskazówki Kryminologia Sprawiedliwość karna Zabieg stomatologiczny
    Liliowy Szkarłat brązowy Miedź Jasny niebieski
    Stomatologia Boskość Sztuki dramatyczne Ekonomia Edukacja
    Pomarańczowy biały Nauka Złoto brązowy Akwamaryn
    Inżynieria język angielski Nauka o środowisku Sztuki piękne Sprawy zagraniczne
    Paw niebieski Rudy Paw niebieski Szałwia Zielony biały
    Służby zagranicznej Leśnictwo Rząd Zdrowie i rehabilitacja Historia
    Szałwia Zielony Nauka Złoto Bezbarwny Borówka Karmazynowy
    Higiena Sztuka przemysłowa Stosunki przemysłowe i pracownicze Projektowanie wnętrz Dziennikarstwo
    Purpurowy Purpurowy biały biały Cytrynowy
    Prawoznawstwo Prawo Listy Literatura Bibliotekoznawstwo
    Nauka Złoto Kelly Green Nauka Złoto Różowy Srebro
    Matematyka Medycyna Nauka wojskowa Muzyka Naprapatia
    Morela Akwamaryn Srebro Kelly Green Jasny niebieski
    Pielęgniarstwo Optometria Kaplica Osteopatia Pedagogia
    Paw niebieski Oliwa Nauka Złoto Ciemny niebieski Szałwia Zielony
    Usługi kadrowe Apteka Filantropia Filozofia* Nauka fizyczna
    Nauka Złoto Zieleń Nilu Nauka Złoto Ciemny niebieski Złoto
    Fizyka Podologia Nauka o policji Politologia Psychologia
    Paw niebieski Łososiowy róż Paw niebieski Niebiesko-Fioletowy Jasny niebieski
    Publiczna administracja Zdrowie publiczne Służba publiczna Planowanie regionalne Edukacja religijna
    Szkarłat Cytryna Nauka Złoto Ciemny niebieski Cytryna
    Święta teologia Nauka sanitarna Nauki ścisłe Etyka społeczna Nauki społeczne
    Cytryna Cytryna biały Srebro Zieleń Nilu
    Usługi społeczne Praca społeczna Socjologia Przemówienie Pedicure chirurgiczna
    Szkarłat Cytryna Niebiesko-Fioletowy Szary Ciemny niebieski
    Teologia Miejskie życie Urbanistyka Nauka weterynaryjna Doktorat Niebieski *

    * Przy określaniu kolorów regaliów akademickich zwróć uwagę na następujące kwestie: Wszystkie stopnie doktora (w przeciwieństwie do stopni doktora) używają koloru „PhD Blue”, który jest ciemnoniebieski, w kolorach akademickich. Na przykład doktorat z psychologii zawierałby w twoim akademickim kapturze kolor złoty, natomiast doktorat z psychologii używałby koloru ciemnoniebieskiego. Jeśli nie masz pewności, czy Twój stopień jest doktoratem lub doktoratem, skontaktuj się z doradcą administracyjnym, aby określić dokładny tytuł stopnia i kolory akademickiego kaptura insygniów.

    Jeśli masz wiele stopni, zasada jest taka, że ​​używasz tylko jednego kaptura i tylko jednego stopnia/koloru dyscypliny. Używasz kaptura i koloru, który reprezentuje twój najwyższy stopień w rankingu (z doktoratem jako najwyższym, magisterskim jako drugim najwyższym, licencjat jako trzecim najwyższym, a Associate jako najniższym). Jeśli masz dwa różne stopnie naukowe na tym samym najwyższym stopniu, zazwyczaj używasz ostatnio przyznanego stopnia jako swojego okręgu.

    Jeśli masz stopień nienotowany, nie ma oficjalnego koloru, a określenie koloru okapu zależy od konkretnej uczelni lub uniwersytetu. Zazwyczaj wybierany jest najbardziej podobny stopień na oficjalnym wykresie. Na przykład, jeśli twój stopień naukowy dotyczy zaawansowanej dziedziny informatyki, zwykle szkoła wybiera Science Gold jako kolor stopnia.

    Kolory podszewki kaptura (pole i szewron)

    Powyższa lista opisuje tylko Twoje aksamitne kolory. Istnieją trzy dodatkowe kolory, które zwykle pasują do twojego kaptura. Są to materiał powłoki (zwykle czarny, ale czasami kolor twojej szaty, jeśli twoja szata ma specjalny kolor, którego używa twoja uczelnia) oraz kolory podszewki.

    Kaptury są podszyte oficjalnym kolorem lub kolorami uczelni przyznającej stopień. Więcej niż jeden kolor jest pokazywany przez podział koloru pola na różne sposoby. Większość szkół dzieli kolor za pomocą pojedynczego szewronu. Czasami szkoła może używać więcej niż jednego szewronu, bez szewronu, ale zamiast tego jednego koloru pola, równego podziału, odwróconego szewronu, prostego paska lub innych metod. Podczas gdy odzież akademicka może wykonać każdy rodzaj kaptura, należy pamiętać, że system zamówień online zakłada jedno pole i jedną standardową szewron. W przypadku innych nietypowych typów okapów będziesz musiał skorzystać z naszych formularzy faksowych do pobrania.

    Starlight Washable Satin (dla kolorów szkolnych kapturów - Tylko profesjonalne okapy w stylu)

    Wiktoriańskie złoto Skorupka jajka Szwajcarska Mokka Kaszmir szałwia Wiktoriański Mauve Srebro Burgundia Czarny Kelly
    Pustynny niebieski Marynarka wojenna Królewskie złoto Królewski biały czerwony Krepa Fioletowy Nowy Łowca Octan Kelly* Octan pomarańczowy*

    * Wskazuje kolor, który nie jest jeszcze dostępny w zmywalnej satynie. Zamiast tego są one zastępowane satynami octanowymi, które należy czyścić chemicznie.

    Tafta poliestrowa (dla kolorów szkolnych kapturów - Tylko kaptury w stylu Verona)

    Królewski niebieski Myśliwy Zielony czerwony biały Burgundia Jasny niebieski
    Złoto Ciemnoniebieski Kelly Green Srebro Purpurowy Czarny

    Oficjalny „Przewodnik po akademickich strojach i ceremoniach akademickich” zawiera zdanie o następującej treści: „Poszczególne firmy produkujące kostiumy akademickie przechowują pełne akta dotyczące zatwierdzonych kolorów dla różnych instytucji”.

    Dawno, dawno temu to zdanie było poprawne. Było to jednak, zanim w ciągu ostatnich 50 lat w całym kraju zaczęły pojawiać się w szybkim tempie uczelnie wyższe, a także zanim instytucje zaczęły praktykować zmianę kolorów kapturów w zależności od stylu, gustu lub pragnień studentów lub ekonomii. produkcja masowa (czasami nawet raz na rok).

    We are the direct manufacturer of academic regalia. This means one good thing and one bad thing (from your perspective).

    The good thing is our prices are significantly lower than your degree-granting university would charge to sell them to you, yet the quality is the same or better than what they offer. That's because we are a relatively lean organization, independent, with over 60 years of experience, and we do not pay sales representatives, or have retail stores, or have a large advertising and marketing budget.

    The bad thing is we cannot keep up with the changes each university makes to their regalia each year, and therefore require that our customers make their own inquiries to their degree-granting universities to discover what the current regalia colors are supposed to be for that school before placing an order.

    We suggest you find out in advance of ordering what your school colors are, and which goes in the field and which goes in the chevron of the hood. You might also ask the following additional information: 1) whether they use 6 or 8 sides for their tam (if you are buying a tam) 2) whether they use a tam or a mortarboard for a Master's degree (if you are inquiring about a master's gown regalia set) 3) whether they use the standard black for the gown and hood shell color or if they have a special color 4) whether they use an embroidered school emblem or symbol on the gown velvet an dif so what it looks like (these are fairly rare, but a few schools use them) 5) and if there is anything special about the regalia not covered by those questions.

    Generally the best source for this information is the University book store or student store. Someone at most bookstores has all of this information.

    You should know that you have the right to purchase your gown from any manufacturer, and not just the company that has a contract with your university. By getting this information on your own and purchasing your regalia from Academic Apparel, you will be saving money, and getting a regalia set that looks at least as good as what your school offers, and often it looks and feels significantly better than the bulk manufactured chinese gowns many colleges are now selling (and ours will last longer than those gowns too).

    While we would really like to help you obtain this information, and hope to some day send out surveys each year to each university asking for this data, it is beyond our abilities to do so right now. If you are willing to do the footwork to find this information out, we know you will get a superb robe, hood, and tam from us, at prices that cannot be beat.


    Angina pectoris

    Botanical medicines

    Crataegus species (hawthorn): Berry and flowering tops extracts reduce angina attacks, lower blood pressure and serum cholesterol levels improve blood and oxygen supply of heart by dilation of coronary vessels improve metabolic processes in heart improve cardiac energy metabolism, enhancing myocardial function with more-efficient use of oxygen interact with key enzymes to enhance myocardial contractility (Textbook,Crataegus oxyacantha [Hawthorn]”).

    Ammi visnaga (khella): ancient Mediterranean medicinal plant used historically to treat angina and other heart ailments. Constituents dilate coronary arteries mechanism of action similar to calcium channel blocking drugs. Constituent khellin is extremely effective in relieving angina symptoms, improving exercise tolerance, and normalizing ECGs. Higher doses (120 to 150 mg q.d.) of pure khellin are linked to mild side effects (anorexia, nausea, dizziness). Most clinical studies used high doses several studies used only 30 mg khellin q.d., which offered good results with fewer side effects. Khella extracts standardized for khellin content (12%) are preferred at dose of 250 to 300 mg q.d. Khella works synergistically with hawthorn.


    Zawartość

    Early symptoms of hepatovirus A infection can be mistaken for influenza, but some sufferers, especially children, exhibit no symptoms at all. Symptoms typically appear 2-6 weeks (the incubation period) after the initial infection. [11] About 90% of children do not have symptoms. The time between infection and symptoms, in those who develop them, is 2-6 weeks, with an average of 28 days. [2]

    The risk for symptomatic infection is directly related to age, with more than 80% of adults having symptoms compatible with acute viral hepatitis and the majority of children having either asymptomatic or unrecognized infections. [12]

    Symptoms usually last less than 2 months, although some people can be ill for as long as 6 months: [13]

    Extrahepatic manifestations Edit

    Joint pains, red cell aplasia, pancreatitis and generalized lymphadenopathy are the possible extrahepatic manifestations. Kidney failure and pericarditis are very uncommon. [15] If they occur, they show an acute onset and disappear upon resolution of the disease. [ wymagany cytat ]

    • Hepatitis A virus[16]
    • Human hepatitis A virus[17]
    • Simian hepatitis A virus[17]

    Taxonomy Edit

    Hepatovirus A is a species of virus in the order Picornavirales, family Picornaviridae, genus Hepatovirus. Humans and other vertebrates serve as natural hosts. [18] [19]

    Nine members of Hepatovirus are recognized. [20] These species infect bats, rodents, hedgehogs, and shrews. Phylogenetic analysis suggests a rodent origin for Hepatitis A.

    A member virus of hepatovirus B (Phopivirus) has been isolated from a seal. [21] [22] This virus shared a common ancestor with Hepatovirus A about 1800 years ago. [ wymagany cytat ]

    Another hepatovirus - Marmota himalayana hepatovirus - has been isolated from the woodchuck Marmota himalayana. [23] This virus appears to have had a common ancestor with the primate-infecting species around 1000 years ago. [ wymagany cytat ]

    Genotypes Edit

    One serotype and seven different genetic groups (four human and three simian) have been described. [24] The human genotypes are numbered I–III. Six subtypes have been described (IA, IB, IIA, IIB, IIIA, IIIB). The simian genotypes have been numbered IV–VI. A single isolate of genotype VII isolated from a human has also been described. [25] Genotype III has been isolated from both humans and owl monkeys. Most human isolates are of genotype I. [26] Of the type I isolates subtype IA accounts for the majority.

    The mutation rate in the genome has been estimated to be 1.73–9.76 × 10 −4 nucleotide substitutions per site per year. [27] [28] The human strains appear to have diverged from the simian about 3600 years ago. [28] The mean age of genotypes III and IIIA strains has been estimated to be 592 and 202 years, respectively. [28]

    Structure Edit

    Hepatovirus A is a picornavirus it is not enveloped and contains a positive-sense, single-strand of RNA packaged in a protein shell. [24] Only one serotype of the virus has been found, but multiple genotypes exist. [29] Codon use within the genome is biased and unusually distinct from its host. It also has a poor internal ribosome entry site. [30] In the region that codes for the HAV capsid, highly conserved clusters of rare codons restrict antigenic variability. [18] [31]

    Rodzaj Struktura Symetria Capsid Genomic arrangement Genomic segmentation
    Hepatovirus Icosahedral Pseudo T=3 Nonenveloped Liniowy Monopartite

    Replication cycle Edit

    Vertebrates such as humans serve as the natural hosts. Transmission routes are fecal-oral and blood. [18]

    Following ingestion, HAV enters the bloodstream through the epithelium of the oropharynx or intestine. [32] The blood carries the virus to its target, the liver, where it multiplies within hepatocytes and Kupffer cells (liver macrophages). Viral replication is cytoplasmic. Entry into the host cell is achieved by attachment of the virus to host receptors, which mediates endocytosis. Replication follows the positive-stranded RNA virus replication model. Translation takes place by viral initiation. The virus exits the host cell by lysis and viroporins. Virions are secreted into the bile and released in stool. HAV is excreted in large numbers about 11 days prior to the appearance of symptoms or anti-HAV IgM antibodies in the blood. The incubation period is 15–50 days and risk of death in those infected is less than 0.5%. [ wymagany cytat ]

    Within the liver hepatocytes, the RNA genome is released from the protein coat and is translated by the cell's own ribosomes. Unlike other picornaviruses, this virus requires an intact eukaryotic initiation factor 4G (eIF4G) for the initiation of translation. [33] The requirement for this factor results in an inability to shut down host protein synthesis, unlike other picornaviruses. The virus must then inefficiently compete for the cellular translational machinery, which may explain its poor growth in cell culture. Presumably for this reason, the virus has strategically adopted a naturally highly deoptimized codon usage with respect to that of its cellular host. Precisely how this strategy works is not quite clear yet. [ wymagany cytat ]

    No apparent virus-mediated cytotoxicity occurs, presumably because of the virus' own requirement for an intact eIF4G, and liver pathology is likely immune-mediated.

    Rodzaj Host details Tissue tropism Entry details Release details Replication site Assembly site Transmission
    Hepatovirus Humans vertebrates Wątroba Cell receptor endocytosis Liza Cytoplasm Cytoplasm Oral-fecal blood

    Transmission Edit

    The virus spreads by the fecal–oral route, and infections often occur in conditions of poor sanitation and overcrowding. Hepatitis A can be transmitted by the parenteral route, but very rarely by blood and blood products. Food-borne outbreaks are common, [34] and ingestion of shellfish cultivated in polluted water is associated with a high risk of infection. [35] About 40% of all acute viral hepatitis is caused by HAV. [32] Infected individuals are infectious prior to onset of symptoms, roughly 10 days following infection. The virus is resistant to detergent, acid (pH 1), solvents (e.g., ether, chloroform), drying, and temperatures up to 60 °C. It can survive for months in fresh and salt water. Common-source (e.g., water, restaurant) outbreaks are typical. Infection is common in children in developing countries, reaching 100% incidence, but following infection, lifelong immunity results. HAV can be inactivated by chlorine treatment (drinking water), formalin (0.35%, 37 °C, 72 hours), peracetic acid (2%, 4 hours), beta-propiolactone (0.25%, 1 hour), and UV radiation (2 μW/cm 2 /min). HAV can also be spread sexual contact specifically oroanal sexual acts. [ wymagany cytat ]

    In developing countries, and in regions with poor hygiene standards, the rates of infection with this virus are high [36] and the illness is usually contracted in early childhood. As incomes rise and access to clean water increases, the incidence of HAV decreases. [37] In developed countries, though, the infection is contracted primarily by susceptible young adults, most of whom are infected with the virus during trips to countries with a high incidence of the disease [2] or through contact with infectious persons.

    Humans are the only natural reservoir of the virus. No known insect or other animal vectors can transmit the virus. A chronic HAV state has not been reported. [38]

    Although HAV is excreted in the feces towards the end of the incubation period, specific diagnosis is made by the detection of HAV-specific IgM antibodies in the blood. [39] IgM antibody is only present in the blood following an acute hepatitis A infection. It is detectable from 1–2 weeks after the initial infection and persists for up to 14 weeks. The presence of IgG antibodies in the blood means the acute stage of the illness has passed and the person is immune to further infection. IgG antibodies to HAV are also found in the blood following vaccination, and tests for immunity to the virus are based on the detection of these antibodies. [39]

    During the acute stage of the infection, the liver enzyme alanine transferase (ALT) is present in the blood at levels much higher than is normal. The enzyme comes from the liver cells damaged by the virus. [40]

    Hepatovirus A is present in the blood (viremia) and feces of infected people up to 2 weeks before clinical illness develops. [40]

    Hepatitis A can be prevented by vaccination, good hygiene, and sanitation. [6] [41]

    Vaccination Edit

    The two types of vaccines contain either inactivated Hepatovirus A or a live but attenuated virus. [3] Both provide active immunity against a future infection. The vaccine protects against HAV in more than 95% of cases for longer than 25 years. [42] In the United States, the vaccine developed by Maurice Hilleman and his team was licensed in 1995, [43] [44] and the vaccine was first used in 1996 for children in high-risk areas, and in 1999 it was spread to areas with elevating levels of infection. [45]

    The vaccine is given by injection. An initial dose provides protection lasting one year starting 2–4 weeks after vaccination the second booster dose, given six to 12 months later, provides protection for over 20 years. [45]

    The vaccine was introduced in 1992 and was initially recommended for persons at high risk. Since then, Bahrain and Israel have embarked on elimination programmes. [46] Australia, China, Belarus, Italy, Spain, and the United States have started similar programmes. The incidence of hepatitis A where widespread vaccination has been practised has decreased dramatically. In China and the United States, the incidence of hepatitis A has decreased by 90% since 1990. [47] [48]

    In the United States, vaccination of children is recommended at 1 and 2 years of age [1] hepatitis A vaccination is not recommended in those younger than 12 months of age. [49] It is also recommended in those who have not been previously immunized and who have been exposed or are likely to be exposed due to travel. [1] The CDC recommends vaccination against infection for men who have sex with men. [50]

    No specific treatment for hepatitis A is known. Recovery from symptoms following infection may take several weeks or months. Therapy is aimed at maintaining comfort and adequate nutritional balance, including replacement of fluids lost from vomiting and diarrhea. [14]

    In the United States in 1991, the mortality rate for hepatitis A was estimated to be 0.015% for the general population, but ranged up to 1.8 -2.1% for those aged 50 and over who were hospitalized with icteric hepatitis. [51] The risk of death from acute liver failure following HAV infection increases with age and when the person has underlying chronic liver disease. [ wymagany cytat ]

    Young children who are infected with hepatitis A typically have a milder form of the disease, usually lasting 1–3 weeks, whereas adults tend to experience a much more severe form of the disease. [34]


    Zawartość

    This degree of diversity makes defining synapomorphy (derived common characteristics) for the group extremely difficult, the order being defined on the basis of molecular affinity rather than morphology. However, some characteristics that are prevalent (common traits) represent potential or putative synapomorphies based on ancestral states. These include flowers that are usually radially symmetric and petals that are free. The gynoecium (female reproductive part) generally consists of two carpels (ovary, style and stigma) that are free, at least toward the apex (partially fused bicarpellate gynoecium) and possess a hypanthium (cup shaped basal floral tube). In the androecium (male reproductive part), the stamen anthers are generally basifixed (attached at its base to the filament), sometimes dorsifixed (attached at centre) (see Carlsward et al (2011) Figure 2). Other commonly occurring features are fruit that is generally follicular (formed from a single carpel), seeds with abundant endosperm surrounding the embryo and leaves with glandular teeth at their margins (glandular dentate, see image). Within the Saxifragales, while the families of the woody clade are primarily woody, the primarily herbaceous families of Crassulaceae and Saxifragaceae exhibit woody features as a secondary transition. [5] [6] [7]

    With 15 families, about 100 genera and about 2,470 species, Saxifragales is a relatively small angiosperm order. [3]

    History Edit

    Saxifragales was first described in 1820 by Berchtold and Presl in 1820 as a group of plants, Saxifrageae, with five genera, including Saxifraga, and therefore bear their names as the botanical authority (Bercht. & J.Presl). [8] At times, that authority has also been given to Dumortier, due to a later publication (1829). Dumortier first used the word Saxifragaceae. [9] By the time of John Lindley's The Vegetable Kingdom (1853), the term Saxifragales was in use, which Lindley called an Alliance, containing five families. [10] Later, the Saxifragales were placed in the angiosperm class Dicotyledons, also called Magnoliopsida. [11]

    Phylogeny Edit

    The order Saxifragales has undergone considerable revision in both placement and composition, since the use of molecular phylogenetics, and the use of the modern Angiosperm Phylogeny Group (APG) classification. [1] [12] They are identified as a strongly monophyletic group. [13]

    In the initial APG publication (1998), the Saxifragales were identified within the core eudicots clade but its relationship to other clades was uncertain. The core eudicots consist of the order Gunnerales and a large clade of Pentapetalae (so named for having a synapomorphy of pentamerous (5 part) perianths), the latter representing about 70% of all angiosperms, with eight major lineages. [14] [15] Later (2003), the order was described as "one of the major surprises of molecular phylogenetic analyses of the angiosperms", having elements previously placed in three or four separate subclasses based on morphology. [16] [3] This was eventually resolved in the third APG system (2009) placing Saxifragales as a sister group to the rosids (Rosidae), within the Pentapetalae clade. [17] [18] [19] This large combination has subsequently been given the name superrosids (Superrosidae), representing part of an early diversification of the angiosperms. [3] [1] [20] Among the rosids, they share a number of similarities with the Rosales, particularly Rosaceae, including a hypanthium, five part flowers and free floral parts. [21] As circumscribed, Saxifragales account for 1.3% of eudicot diversity. [22]

    Biogeography and evolution Edit

    Diversification among Saxifragales was rapid, with the extensive fossil record [24] [25] [26] [27] [28] [29] indicating that the order was more diverse and more widespread than an examination of the extant members suggests, with considerable phenotypic diversity occurring early. [2] The earliest fossil evidence is found in the Turonian-Campanian (late Cretaceous), suggesting a minimum age of 89.5 Myr. However, molecular divergence time estimation suggest an earlier time of 102–108 Myr, into the early Cretaceous, for the crown and stem groups respectively. Within the order Saxifragales, the molecular data imply a very rapid initial diversification time of about 6–8 Myr, between 112–120 Myr, with major lineages appearing within 3–6 Myr. [30] [3] [31]

    The ancestral state appears to be woody, as in Peridiscaceae and the woody clade, but is also ancestral to Grossulariaceae. A number of independent transitions to a herbaceous habit occurred in the ancestors of Crassulaceae, Saxifragaceae and the base of the Haloragaceae-Penthoraceae clade (the other two families in Haloragaceae s.l. remaining woody), while other taxa reverted to a woody habit, especially Crassulaceae. Most of Saxifragales have a superior ovary, but some families show frequent transition with inferior or subinferior position, particularly Saxifragaceae and to a lesser extent Hamamelidaceae. Almost all Grossulariaceae have an inferior ovary. The ancestral carpel number is two, with transition to higher numbers, such as four in Haloragaceae s.l. and Peridiscaceae with five in Penthoraceae. The ancestral carpel number for Crassulaceae is five, decreasing to four in Kalanchoe, where it is synapomorphic for the genus, though the most frequent transition in this family is 6–10, but only where stamen number is increased above five. Some Macaronesian taxa (Aeonieae) have 8–12, with up to 32 carpels for Aeonium. [3]

    The ancestral petal number is five, with three major transitions 5 to 0, 5 to 4, 5 to 6–10. Increased petal number is seen in Paeoniaceae and Crassulaceae, particularly where stamen number is also increased. Cercidiphyllum + Daphniphyllum, Chrysosplenium and Altingia are examples of the complete loss of petals. The ancestral stamen:petal ratio is 1, with transitions characterising several clades, e.g. Paeonicaceae+woody clade >2, Crassulaceae 2 (but Crassula 1). Overall there has been a decrease over evolution, but independent of a decrease in petal number, so that it is the stamen number that has decreased. [3] The ancestral habitat appears to be forests, followed by early diversification into desert and aquatic habitats, with shrubland the most recent colonization. [2]

    Species diversification was rapid following a transition from a warmer, wetter Earth in the Eocene (56–40 Myr) to early Miocene (23–16 Myr), to the cooler drier conditions of the mid-Miocene (16–12 Myr). However, this appears to not have coincided with ecological and phenotypic evolution, which are themselves correlated. There is a clear lag, whereby increase in species diversification was followed later by increases in niche and phenotypic lability. [32]

    Subdivision Edit

    The first APG classification (1998) placed 13 families with the order Saxifragales: [33]

    This was subsequently revised to 15, in the fourth version (2016). [1] The Saxifragales families have been grouped into a number of informally named suprafamilial subclades, with the exception of the basal split of Peridiscaceae, which thus forms a sister group with the rest of Saxifragales. The two major ones are (Paeoniaceae + the woody clade of primarily woody families) and the "core" Saxifragales (i.e. the primarily herbaceous families), with the latter subdivided into two further subclades, (Haloragaceae sensu lato + Crassulaceae) and the Saxifragaceae alliance. [3]

    In the clade Haloragaceae sensu lato (s.l.) + Crassulaceae the genera constituting Haloragaceae s.l. are all small, and APG II (2003) proposed merging them into a single larger Haloragaceae s.l., but transferred Aphanopetalum from Cunoniaceae to this group. [16] The Saxifragaceae alliance represents Saxifragaceae together with a number of woody members of the traditional Saxifragaceae sensu Engler (1930). [34] Within this, APG II (2003) proposed placing the two species of Pterostemon that constitute Pterostemonaceae within Iteaceae, and all subsequent versions have maintained this practice. [16] Thus Saxifragales sensu APG II consisted of only 10 families. The third version (2009) added Peridiscaceae (from Malpighiales), as sister to all other families, but re-expanded Haloragaceae to provide for a narrower circumscription, Haloragaceae sensu stricto (s.s.), to give a total of 14 families. APG IV (2016) added the parasitic family Cynomoriaceae to provide a total of 15 families, although its placement within the order remained unclear. [35] [1]

    Of the 15 families included in APG IV, the basal divergence Peridiscaceae underwent radical shifting and recircumscription from 2003 to 2009. Originally, it consisted of two closely related genera, Peridiscus oraz Whittonia. The APG II system placed the family in Malpighiales, based on a DNA sequence for the rbcL gene from Whittonia. This sequence turned out to be not from Whittonia, but from other plants whose DNA had contaminated the sample. [36] After placement in Saxifragales, it was expanded to include Soyauxia in 2007, [37] and Medusandra in 2009. [38]

    In the first of the subclades of the remaining Saxifragales, Paeoniaceae possesses many unique features and its taxonomic position was controversial for a long time, [39] and Paeonia was placed in Ranunculales, close to Glaucidium, [40] [41] prior to transfer to Saxifragales as sister to the woody clade. [30] [42]

    In the woody clade, the genus Liquidamber was included in Hamamelidaceae until molecular phylogenetic studies showed that its inclusion might make Hamamelidaceae paraphyletic, and was segregated as a separate monotypic family, Altingiaceae in 2008. [30] Cercidiphyllaceae was for a long time associated with Hamamelidaceae and Trochodendraceae and was often thought to be closer to the latter, [43] which is now in the basal eudicot order Trochodendrales. [44] Daphniphyllum was always thought to have an anomalous combination of characters [45] [45] and was placed in several different orders before molecular phylogenetic analysis showed it to belong to Saxifragales. [46]

    In the core Saxifragales, Crassulaceae [47] and Tetracarpaeaceae [48] have been associated with Saxifragaceae, while Penthorum has been associated both with Crassulaceae and Saxifragaceae, [49] before being placed here. Aphanopetalum was often placed in Cunoniaceae, a family in Oxalidales, even though there were good reasons to put it in Saxifragales, [50] and it was subsequently transferred. [51] Haloragaceae was included in Myrtales, [52] before being placed in Saxifragales. [53]

    The other "core" group, the Saxifragaceae alliance comprises four families: Pterostemonaceae, Iteaceae, Grossulariaceae, and Saxifragaceae, [30] which have long been known to be related to each other, but the circumscription of Saxifragaceae has been much reduced and Pterostemonaceae submerged as Pterostemon in Iteaceae. [54]

    Most of the families are monogeneric. Choristylis is now considered a synonym of Itea, but the addition of Pterostemon, gives Iteaceae two genera. [55] Liquidambar oraz Semiliquidambar are also submerged into Altingia, making Altingiaceae monogeneric. [56] [57] About 95% of the species are in five families: Crassulaceae (1400), Saxifragaceae (500), Grossulariaceae (150–200), Haloragaceae (150), and Hamamelidaceae (100). [22] [30] [58]


    Obejrzyj wideo: Babcine żeberka w sosie własnym (Czerwiec 2022).


Uwagi:

  1. Mazuzil

    Mylisz się. Proponuję to omówić. Napisz do mnie w PM, rozmawia z tobą.

  2. Alim

    Mylisz się. Mogę bronić swojej pozycji. Napisz do mnie na PM, porozmawiamy.

  3. Mekledoodum

    Całkowicie się z Tobą zgadzam. Podoba mi się ten pomysł, całkowicie się z tobą zgadzam.

  4. Branson

    Nie zrobisz tego.

  5. Macneill

    Bravo, co za zdanie ... cudowna myśl



Napisać wiadomość