Informacja

Antybiotyk „kanamycyna” w hodowli E. coli

Antybiotyk „kanamycyna” w hodowli E. coli


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Jestem studentką pierwszego roku i nie jestem pewien, czy dobrze rozumiem rolę antybiotyku „kanamycyna” w hodowli kultury E. coli (Rosetta).

Czy ktoś może mi wyjaśnić, dlaczego podczas tego procesu używamy antybiotyku „kanamycyny” i genu oporności na kanamycynę?


Absolutnie, Pozytywny wybór

Szukasz bakterii, które mieć gen (prawdopodobnie plazmid), który ty (lub ktoś inny dla ciebie) umieściłeś w bakterii. Ten gen pozwala im żyć w obecności kanamycyny, a każda bakteria, która jej nie ma lub próbuje się jej pozbyć, umrze. W ten sposób możesz wybrać bakterie, które chcesz, zabijając wszystko inne (mam nadzieję, że twoja próbka nie jest zanieczyszczona innymi bakteriami, które również są odporne na kanamycynę).

Całkowicie myślałem, że będzie dobry artykuł wiki na temat pozytywnej selekcji, ale tak nie jest. Powodem, dla którego jest to selekcja pozytywna, jest to, że wybierasz bakterie, które coś mają; zamiast negatywnej selekcji, w której zabijałbyś ich za posiadanie czegoś.

Możesz znaleźć o wiele więcej, wyszukując „dobór pozytywny” lub bardziej ogólnie „dobór sztuczny”.


Zgodnie z tym arkuszem danych genotyp szczepu RosettaTM(DE3)pLysS to F- ompT hsdS (r- m-) gal dcm (DE3) pLysSRARE (Camr).

Szczep ten przenosi pewne geny tRNA na tym samym plazmidzie co gen LysS, a te tRNA zwiększają ekspresję genów zawierających rzadkie (w E. coli) kodony. Plazmid koduje oporność na chloramfenikol (Camr).

Jeśli masz protokół, który sugeruje hodowlę twojego szczepu pod selekcją kanamycyny, to prawdopodobnie masz obecny dodatkowy plazmid, który niesie twój interesujący gen. Następnie, jak mówi przyjęta odpowiedź, wybierasz pozytywnie właściwy szczep.

Nie wiem, jak stabilny jest plazmid pLysSRARE, ale spodziewałbym się, że powinieneś również zachować selekcję pod kątem oporności na chloramfenikol.


Testowanie antybiotyku na bakteriach

Wstęp Problem Określenie wpływu dziesięciu różnych antybiotyków na dwa różne typy bakterii. Przetestuję sześć antybiotyków na Escherichia coli i sześć antybiotyków na Bacillus subtilis. Na Escherichia coli przetestuję tetracyklinę, chloramfenikol, furadantynę, kwas nalidyksowy, potrójną sulfonamidę i kanamycynę. Na Bacillus subtilis przetestuję streptomycynę, erytromycynę, nowobiocynę, tetracyklinę, chloramfenikol i penicylinę. Na marginesie chciałbym również sprawdzić, czy Bacillus subtilis wykazuje oporność na penicylinę. Stosowanie penicyliny zmniejsza się ze względu na oporność wielu rodzajów bakterii na nią.

Zastrzeżenie: Ta praca została przesłana przez studenta. To nie jest przykład pracy napisanej przez profesjonalnych pisarzy akademickich. Tutaj możesz zamówić profesjonalną pracę. (Znajdź cenę odpowiadającą Twoim wymaganiom)

* Zaoszczędź 10% na pierwszym zamówieniu, kod promocyjny rabatu „096K2”

Hipoteza Moja hipoteza jest taka, że ​​penicylina w największym stopniu hamuje wzrost przeciwko Bacillus subtilis, a tetracyklina powstrzymuje Escherichia coli skuteczniej niż inne. Uzasadnienie Uważam, że ten eksperyment jest słuszny, ponieważ pokazuje, jak różne antybiotyki reagują na różne typy bakterii. Wskazuje również na fakt, że nie wszystkie antybiotyki działają tak samo lub w ogóle działają na wszystkie rodzaje bakterii. Materiały 1 butelka agaru trypsynowo-sojowego 1 kultura Escherichia coli 1 kultura Bacillus subtilis 4 sterylne szalki Petriego 1 opakowanie krążków testowych 2 sterylne pipety 2 probówki soli fizjologicznej 1 szczypce 1 ołówek woskowy 2 sterylne waciki Metoda 1. Poluzuj zatyczkę agar tryptozowo-sojowy, aby umożliwić odpowietrzenie.

Umieść butelkę w łaźni wodnej o temperaturze 100 stopni Celsjusza, aby poziom wody osiągnął poziom medium. Agar stopi się po około 20 minutach. 2. Stopniowo schłodzić medium do około 45 stopni Celsjusza, pozwalając łaźni wodnej ostygnąć.

Przegląd antybiotyków

Cytując te streszczenia, prosimy używać następującego odnośnika: Autor(zy) streszczenia. Tytuł streszczenia [abstrakt]. Int J Infect Dis 201014S1: Numer abstrakcyjny. Proszę zauważyć, że oficjalna publikacja International Journal of Infectious Diseases 2010, tom 14, suplement 1 jest dostępna w formie elektronicznej na stronie http://www.ijidonline.com/ Final Abstract Number: 23.001 Session: Antibiotic .

Następnie odstaw na 10 minut. 3. Wlej dwie płytki dla każdego gatunku bakterii. Agar powinien mieć głębokość około 5 mm. Przykryj każdą szalkę Petra natychmiast po porcjowaniu, aby zapobiec zanieczyszczeniu. 4.

Po wylaniu płytek pozostaw agar na kilka minut do zestalenia. Możesz to sprawdzić, przechylając płytę. Jeśli agar spływa w jedną stronę, potrzebny jest dłuższy czas chłodzenia. 5. Dodaj probówkę soli fizjologicznej do każdej probówki do hodowli bakterii.

Załóż górną część probówki z solą fizjologiczną. Zakręć probówką hodowlaną, aby rozproszyć bakterie w soli fizjologicznej. 6. Za pomocą sterylnej pipety przenieść 0.

25 ml soli fizjologicznej z jednej probówki bakteryjnej na każdą z dwóch płytek. Sterylnym wacikiem rozprowadź roztwór soli fizjologicznej cienką warstwą na całej powierzchni agaru. Powtórz z drugą probówką i płytkami bakteryjnymi, używając pipety i wacika. Odczekaj 5 do 10 minut, aby płyn wchłonął się do agaru. 7. Za pomocą ołówka woskowego oznacz każdą potrawę, aby wiedzieć, jaki gatunek zawiera.

8. Po zestaleniu się agaru można dodać krążki testowe na antybiotyki. Używając kleszczyków płonących pomiędzy każdą operacją, umieść po jednym krążku każdego typu na powierzchni każdej płytki agarowej. Dyski powinny być oddalone od siebie o około 3 cm.

Antybiotyk na każdym krążku powinien być oznaczony następującymi skrótami: S = Streptomycyna, E = Erytromycyna, N = Nowobiocyna, T = Tetracyklina, C = Chloramfenikol, P = Penicylina, F = Furadantyna, Na = Kwas nalidyksowy, Ts = Potrójny sulfon , K = kanamycyna 9. Po umieszczeniu kultur w inkubatorze przez 48 godzin. Usuń je i sprawdź wokół każdego krążka obszar, w którym bakteria nie może się rozwijać. Zmierz każdy obszar wzrostu w milimetrach i zapisz je na stole (patrz tabela 1).

Esej o płytce agarowej i roślinie winorośli Cobra

I. Tło produktu A. Wprowadzenie W tym niezwykle luksusowym, ekstrawaganckim świecie jedzenie i inne napoje zawsze były jedną z rzeczy, które podtrzymują główny nurt życia. Oprócz tego, że są jedną z podstaw przetrwania, zebrania są również doskonalone przez przygotowywanie posiłków, a stres jest obecnie często kojarzony z jedzeniem. Działania te pokazują, że spożycie żywności w dzisiejszych czasach znacznie różni się od .

Wyszukiwanie literatury Escherichia to rodzaj bakterii w kształcie pałeczki, należący do rodziny Enterobacteriaceae. Nazwany na cześć Theodora Escher ich (1857-1911), niemieckiego bakteriologa, jedyny gatunek, Escherichia coli, występuje w dużych ilościach jako normalny mieszkaniec jelita grubego zwierząt stałocieplnych.

Za każdym razem, gdy opuszczają swoje zwykłe środowisko, organizmy te mogą powodować infekcje dróg moczowych, zapalenie otrzewnej, zapalenie wsierdzia i inne choroby. Niektóre szczepy powodują ciężkie zapalenie żołądka i jelit. E. coli jest szeroko stosowana jako model w badaniach biologii molekularnej. Niektóre rzadkie szczepy bakterii Escherichia coli mogą powodować zatrucie pokarmowe u małych dzieci, osób starszych i osób z upośledzonym układem odpornościowym.

E. coli 0157: H 7, normalnie występujący w jelitach i odchodach ludzi i zwierząt, może przetrwać w mięsie, jeśli mięso nie jest gotowane powyżej 155 stopni F. Wybuch tego rodzaju zatrucia pokarmowego w 1993 roku w USA, który dotknął ponad 450 osób przypisano skażonym hamburgerom, które były rzadko gotowane. W 1928 r. Alexander Fleming zauważył, że wzrost bakterii produkującej ropę, Staphylococcus aureus, zatrzymał się wokół obszaru, w którym zaczęła rosnąć przenoszona drogą powietrzną pleśń Penicillium no tatum.

Fleming ustalił, że z pleśni rozprzestrzeniła się substancja chemiczna i nazwał ją penicyliną. Małe, nieczyste ilości, które początkowo wyodrębnił, nie miały mocy, co dało rozczarowujące wyniki we wczesnych próbach leczenia ludzkich infekcji penicyliną. W 1939 roku Ernst Boris Chain, Howard Walter Florey i Edward Penney Abraham z Oxford University zaczęli badać możliwość, że czystsze, bardziej stabilne preparaty penicylinowe mogą być skuteczne. W 1941 r. częściowo oczyszczony materiał podano policjantowi choremu na zapalenie kości i szpiku. Nastąpiła dramatyczna poprawa, ale zapasy wyczerpały się, zanim udało się wyleczyć i pacjent zmarł. Niemniej sprawa oczywiście zasługiwała na dalsze zbadanie, a wybuch II wojny światowej dodał element pilności.

Wojna jednak przeszkodziła w próbach produkcji penicyliny w Anglii na dużą skalę. Łańcuch w związku z tym ręcznie przewoził fiolkę formy do Stanów Zjednoczonych, gdzie niezbędne zdolności przemysłowe były dostępne do masowej produkcji. Zastosowanie technologii warzenia piwa przyniosło duże ilości płynu pleśniowego, z którego można było mozolnie odzyskiwać częściowo oczyszczoną penicylinę do użytku klinicznego. Pierwsze partie stały się dostępne do użytku wojskowego w 1943 roku.

Artykuł semestralny na temat skutków ubocznych Antybiotyki Antybiotyk bakteryjny

Antybiotyki odegrały ważną rolę w naszym społeczeństwie dzięki uważnym obserwacjom Sir Alexandra Fleminga w 1928 roku. Bez nich wiele istnień byłoby zagrożonych chorobami zakaźnymi. Antybiotyki to substancje chemiczne wytwarzane przez różne gatunki mikroorganizmów i inne układy żywe, które w niewielkich stężeniach są zdolne do hamowania wzrostu lub zabijania bakterii i innych.

Materiał był tak rzadki, że zebrano mocz pacjentów, a wydalona penicylina rekrystalizowała do ponownego użycia. W międzyczasie Rene Dubois z Instytutu Rockefellera podążał za oryginalnym tokiem myślenia Pasteura. Obserwując, że populacje drobnoustrojów w glebie trzymają się nawzajem w ryzach, w 1939 r. wyizolował i oczyścił antybiotyk z bakterii glebowej. Ten i wyizolowane następnie podobne substancje były skuteczne po nałożeniu na powierzchowne rany, ale okazały się zbyt toksyczne do podawania ogólnoustrojowego.

Do 1944 roku Selman Abraham Waksman i jego współpracownicy wyizolowali streptomycynę z drobnoustroju glebowego i udowodnili jej skuteczność przeciwko prątkowi gruźlicy. W latach 1945-1960 prowadzono systematyczne poszukiwania antybiotyków pochodzących z bakterii i pleśni występujących na całym świecie. Odkryto wiele setek antybiotyków, a dziesiątki przebadano pod kątem aktywności i toksyczności antybiotyków. Wiele z nich zostało ostatecznie wprowadzonych na rynek, a stosowanie na receptę stanowiło setki ton rocznie. W 1957 roku w laboratorium zsyntetyzowano penicylinę.

Całkowita synteza penicylin okazała się zbyt kosztowna, ale zebranie podstawowych cząsteczek penicyliny z pleśni Penicillium, a następnie dołączenie różnych cząsteczek okazało się wykonalne i doprowadziło do powstania dużej liczby dostosowanych do potrzeb wariantów penicyliny. W latach 60. nastąpiła prawdziwa eksplozja tak zwanych półsyntetycznych (częściowo wytwarzanych przez pleśń, częściowo syntetycznych) penicylin, z których każda została zaprojektowana w celu radzenia sobie z rosnącym problemem bakterii opornych na penicylinę, w celu uzyskania lepszego wchłaniania i wyższych stężeń w organizmie lub poszerzyć spektrum skutecznych środków przeciwdrobnoustrojowych penicylin’. Wniosek Mój wniosek jest taki, że moja hipoteza była tylko częściowo poprawna. W swojej hipotezie stwierdziłem, że penicylina najlepiej hamuje rozwój bakterii u Bacillus subtilis. Ta część hipotezy była poprawna. Stwierdziłem jednak również, że tetracyklina najlepiej hamuje rozwój bakterii u Escherichia coli.

Ta sekcja była nieprawidłowa. Antybiotykiem, który najlepiej działał na Escherichia coli, był kwas nalidyksowy. Wyniki W moim eksperymencie uzyskałem następujące wyniki: Bacillus subtilis (gram dodatni) Obszar wzrostu: Tetracyklina: 12 mm Nowobiocyna: 9 mm Chloramfenikol: 18 mm Strepomycyna: 11 mm Penicylina: 21 mm Erytromycyna: 15 mm Escherichia coli (gram ujemny) Wzrost Powierzchnia: Chloramfenikol: 17 mm Kanamycyna: 11 mm Potrójna sulfonamida: 9 mm Kwas nalidyksowy: 17 mm Furadantyna: 14 mm Tabela 1 Escherichia coli Bacillus subtilis Antybiotyk Szerokość w mm Antybiotyk Szerokość w mm Chloramfenikol 12 Tetracyklina 12 Kanamycyna 11 Nowobiocyna 9 Potrójna sulfonamida 9 Chloramfenikol 18 Kwas nalidyksowy 17 Strepomycyna 11 Furadantyna 14 Penicylina 21 Tetracyklina 10 Erytromycyna 15 Bibliografia Farmakopea Stanów Zjednoczonych. Pełne odniesienie do leków. Consumer Reports Books, Yonkers, Nowy Jork. Prawa autorskie 1994.

Esej o rozwoju gospodarczym Indii i Chin

Indie z około 1,2 miliona ludności i Chiny z około 1,3 miliarda to dwa duże demograficzne i wschodzące kraje na świecie. W ciągu ostatnich kilkudziesięciu lat połączeniu Indii z gospodarką towarzyszył niezwykły wzrost gospodarczy (Bank Światowy 2011¬). Indie zajmują 3. miejsce w gospodarce pod względem parytetu siły nabywczej (PPP) (The Economic Times, 2012). .

s. 45, 970, 1489, 1686 Fakty i porównania. Fakty i porównania leków. Fakty i porównania Inc, St. Louis.

Copyright 1991. s. 120, 1374, 1598, 1895 USP DI. Podmiot medyczny. Konwencja Farmakopei Stanów Zjednoczonych. Rockville, Maryland. Prawa autorskie 1985.

Podobne dokumenty

Skutki uboczne Antybiotyki Bakterie Antybiotyk

. Bakterie były gatunkiem Penicillium, nazwał on substancję zabijającą zarazki penicyliną. Pierwsze użycie antybiotyku, . na światło słoneczne, leki te są podawane z ostrożnością. Tetracykliny. Tetracykliny są skuteczne w przypadku zapalenia płuc, tyfusu i innych.

Bakteryjne antybiotyki DNA Bakterie Antybiotyk

. antybiotyki. Istnieje wiele przypadków wielolekooporności bakterii, ale najbardziej znanym był triumf Staph. Chociaż Penicylina . bakteria, o której wiadomo, że jest oporna na ampicylinę, karbenicylinę, tetracyklinę, streptomycynę, .

Penicylina śmiertelne bakterie

. Problemy Jednym z problemów związanych z penicyliną i innymi nowszymi antybiotykami jest to, że bakterie stają się na nie oporne, ponieważ . umierał od śmiercionośnych bakterii. Dopóki nie odkryto penicyliny, nie było żadnej znanej formy antybiotyku do leczenia zakaźnego.

Wpływ antybiotyków na wzrost bakterii

. antybiotyk w hodowli bakterii: Tetracyklina Chloramfenikol Kanamycyna Neomycyna Penicylina Streptomycyna Erytromycyna B. Cerus 5. 5 9 56. 6 1 7 13 E. Coli . powierzchnia. Escherichia coli to choroba wywołująca pałeczki Gram-ujemne. Te bakterie są.


Wstęp

Escherichia coli jest częstym mieszkańcem jelit ludzi i zwierząt, ale można go również znaleźć w wodzie, glebie i roślinności. Jest głównym patogenem powodującym infekcje dróg moczowych 1 , 2 , 3 i jest jednym z najczęstszych patogenów powodujących infekcje krwi 4 , rany, zapalenie ucha środkowego i inne powikłania u ludzi 5 , 6 . E coli jest również najczęstszą przyczyną biegunki przenoszonej przez żywność i wodę u ludzi na całym świecie iw krajach rozwijających się, powodując wiele zgonów dzieci poniżej piątego roku życia 7 .

Oporność na środki przeciwdrobnoustrojowe w E coli odnotowuje się na całym świecie i wzrasta odsetek oporności wśród E coli jest coraz większym problemem zarówno w krajach rozwiniętych, jak i rozwijających się 8 , 9 . Wzrost oporności bakterii na antybiotyki komplikuje leczenie infekcji. Ogólnie do 95 % przypadków z ciężkimi objawami leczy się bez badania bakteriologicznego 10 . Profile występowania i podatności E coli wykazują znaczne różnice geograficzne, a także znaczące różnice w różnych populacjach i środowiskach 11 . W Etiopii przeprowadzono szereg badań dotyczących rozpowszechnienia i wzorców oporności na środki przeciwdrobnoustrojowe E coli z różnych źródeł klinicznych 5 , 12 , 13 . Celem tego badania było określenie wrażliwości przeciwdrobnoustrojowej E coli ze źródeł klinicznych w Dessie Regional Health Research Laboratory.


Kod MATLAB używany do analizy eksperymentów jest dostępny u odpowiedniego autora na żądanie.

Blankenship, R.E. i in. Porównanie wydajności fotosyntezy i fotowoltaiki oraz rozpoznanie potencjału poprawy. Nauki ścisłe 332, 805–809 (2011).

Scheffe, JR & Steinfeld, A. Materiały do ​​wymiany tlenu do słonecznego termochemicznego rozszczepiania H2O i CO2: recenzja. Matko. Dziś 17, 341–348 (2014).

Snoeckx, R. & Bogaerts, A. Technologia plazmowa — nowatorskie rozwiązanie dla CO2 konwersja? Chem. Soc. Obrót silnika. 46, 5805–5863 (2017).

Zhang, Q., Kang, J. & Wang, Y. Opracowanie nowych katalizatorów do syntezy Fischera-Tropscha: dostrojenie selektywności produktu. ChemCatChem 2, 1030–1058 (2010).

Jouny, M., Luc, W. & Jiao, F. Ogólna analiza techniczno-ekonomiczna CO2 systemy elektrolizy. inż. Chem. Res. 57, 2165–2177 (2018).

Yishai, O., Lindner, S.N., Gonzalez de la Cruz, J., Tenenboim, H. & Bar-Even, A. The mrówczan bio-gospodarka. Aktualn. Opinia. Chem. Biol. 35, 1–9 (2016).

Szima, S. i Cormos, CC Poprawa syntezy metanolu z bezwęglowego H2 i wychwycony CO2: ocena techniczno-ekonomiczna i środowiskowa. J. CO2 Utyl. 24, 555–563 (2018).

Bertsch, J. & Muller, V. Bioenergetyczne ograniczenia konwersji gazu syntezowego na biopaliwa w bakteriach octowych. Biotechnologia. Biopaliwa 8, 210 (2015).

Bennett, RK, Steinberg, LM, Chen, W. i Papoutsakis, ET Inżynieria biokonwersji metanu i metanolu w paliwa i chemikalia w natywnych i syntetycznych metylotrofach. Aktualn. Opinia. Biotechnologia. 50, 81–93 (2017).

Muller, J.E. i in. Inżynieria Escherichia coli do konwersji metanolu. Metab. inż. 28, 190–201 (2015).

Dai, Z. i in. Strategie budowy metabolicznej do bezpośredniego wykorzystania metanolu w Saccharomyces cerevisiae. Zasoby biologiczne. Technol. 245, 1407–1412 (2017).

Yu, H. i Liao, J. C. Zmodyfikowany cykl serynowy w Escherichia coli obejmuje metanol i CO2 do związków dwuwęglowych. Nat. Komunia. 9, 3992 (2018).

Meyer, F. i in. Niezbędny do metanolu wzrost Escherichia coli. Nat. Komunia. 9, 1508 (2018).

Woolston, BM, King, JR, Reiter, M., Van Hove, B. & Stephanopoulos, G. Poprawa zużycia formaldehydu napędza asymilację metanolu w inżynierii E coli. Nat. Komunia. 9, 2387 (2018).

Bennett, RK, Gonzalez, JE, Whitaker, WB, Antoniewicz, MR i Papoutsakis, ET Ekspresja heterologicznego nieoksydacyjnego szlaku pentozofosforanowego z Bacillus metanolicus a delecja izomerazy fosfoglukozy poprawia asymilację metanolu i produkcję metabolitów przez syntetyczny Escherichia coli metylotrof. Metab. inż. 45, 75–85 (2017).

Gonzalez, J., Bennett, RK, Papoutsakis, ET i Antoniewicz, M.R. Asymilacja metanolu w Escherichia coli poprawia się przez jednoczesne wykorzystanie treoniny i usunięcie białka regulacyjnego reagującego na leucynę. Metab. inż. 45, 67–74 (2017).

Rohlhill, J., Sandoval, NR i Papoutsakis, ET Sort-Seq podejście do inżynierii promotora indukowanego formaldehydem dla dynamicznie regulowanej Escherichia coli wzrost na metanolu. Syntezator ACS. Biol. 6, 1584–1595 (2017).

Woolston, BM, Roth, T., Kohale, I., Liu, DR i Stephanopoulos, G. Opracowanie bioczujnika formaldehydu z zastosowaniem do syntetycznej metylotrofii. Biotechnologia. Bioeng. 115, 206–215 (2018).

Whitaker, W.B. i in. Inżynieria biologicznego przekształcania metanolu w specjalistyczne chemikalia w Escherichia coli. Metab. inż. 39, 49–59 (2017).

Lu, X. i in. Konstruowanie szlaku syntetycznego dla acetylokoenzymu A od jednego węgla poprzez projektowanie enzymów. Nat. Komunia. 10, 1378 (2019).

Wang, X. i in. Biologiczna konwersja metanolu przez wyewoluowany Escherichia coli niosący liniowy szlak asymilacji metanolu. Zasoby biologiczne. Bioproces. 4, 41–46 (2017).

Antoniego, C. Biochemia metylotrofów (Prasa akademicka, 1982).

Drake, H.L., Kirsten, K. i Matthies, C. Acetogenic Prokaryotes. w Prokariota (red., Stanley Falkow, Eugene Rosenberg, Karl-Heinz Schleifer, Erko Stackebrandt) 354-420 (Springer, 2006).

Bar-Even, A., Noor, E., Flamholz, A. & Milo, R. Projektowanie i analiza szlaków metabolicznych wspierających wzrost formatotroficzny dla hodowli drobnoustrojów zależnej od elektryczności. Biochim. Biofizyka. Acta 1827, 1039–1047 (2013).

Bar-Even, A. Czy acetogeneza naprawdę wymaga szczególnie niskiego potencjału redukcyjnego? Biochim. Biofizyka. Acta 1827, 395–400 (2013).

Noor, E. i in. Termodynamika szlakowa wskazuje na przeszkody kinetyczne w metabolizmie ośrodkowym. Komputer PLoS. Biol. 10, e1003483 (2014).

Figueroa, I.A. i in. Metagenomiczna analiza mikrobiologicznego chemolitoautotroficznego utleniania fosforynów dostarcza dowodów na siódmy naturalny CO2 ścieżka fiksacji. Proc. Natl Acad. Nauka. USA 115, E92–E101 (2018).

Kawasaki, H., Sato, T. i Kikuchi, G. Nowa reakcja na biosyntezę glicyny. Biochem. Biofizyka. Res. Komunia. 23, 227–233 (1966).

Motokawa, Y. & Kikuchi, G. Metabolizm glicyny przez mitochondria wątroby szczura. Rekonstrukcja odwracalnego systemu rozszczepiania glicyny z częściowo oczyszczonymi składnikami białkowymi. Łuk. Biochem. Biofizyka. 164, 624–633 (1974).

Pasternack, L. B., Laude, D. A. Jr. & amp Appling, D. R. 13 C NMR detekcja syntezy seryny i glicyny za pośrednictwem kwasu foliowego in vivo in vivo Saccharomyces cerevisiae. Biochemia 31, 8713–8719 (1992).

Tashiro, Y., Hirano, S., Matson, MM, Atsumi, S. & Kondo, A. Hybrydowy system elektryczno-biologiczny do CO2 zmniejszenie. Metab. inż. 47, 211–218 (2018).

Yishai, O., Bouzon, M., Doring, V. & Bar-Even, A. Asymilacja jednego węgla in vivo poprzez syntetyczną redukcyjną ścieżkę glicyny w Escherichia coli. Syntezator ACS. Biol. 7, 2023–2028 (2018).

Crowther, GJ, Kosaly, G. & Lidstrom, ME mrówczan jako główny punkt rozgałęzienia metabolizmu metylotroficznego w Methylobacterium extorquens AM1. J. Bakteriol. 190, 5057–5062 (2008).

Tishkov, VI & Popov, VO Mechanizm katalityczny i zastosowanie dehydrogenazy mrówczanowej. Biochem. (Mosc.) 69, 1252–1267 (2004).

Wenk, S., Yishai, O., Lindner, S.N. & Bar-Even, A. Inżynierskie podejście do zmiany metabolizmu drobnoustrojów. Metody Enzymol. 608, 329–367 (2018).

Bassalo, MC i in. Szybka i wydajna jednoetapowa integracja szlaku metabolicznego w E coli. Syntezator ACS. Biol. 5, 561–568 (2016).

Gleizer, S. i in. Konwersja Escherichia coli generowanie całego węgla z biomasy z CO2. Komórka 179, 1255-1263.e12 (2019).

Claassens, NJ, Cotton, CA, Kopljar, D. i Bar-Even, A. Ilościowe rozumienie produkcji elektrodrobnoustrojowej. Nat. Kat. 2, 437 (2019).

Nicholls, P. Mrówczan jako inhibitor oksydazy cytochromu c. Biochem. Biofizyka. Res. Komunia. 67, 610–616 (1975).

Warnecke, T. & Gill, RT Toksyczność, tolerancja i produkcja kwasu organicznego w Escherichia coli zastosowania biorafinacji. Mikro. Fakt komórki. 4, 25 (2005).

Dragosits, M. & Mattanovich, D. Adaptacyjna ewolucja laboratoryjna — zasady i zastosowania biotechnologii. Mikro. Fakt komórki. 12, 64 (2013).

Wytock, T.P. i in. Eksperymentalna ewolucja różnorodnych Escherichia coli mutanty metaboliczne identyfikują loci genetyczne dla zbieżnej adaptacji tempa wzrostu. PLoS Genet. 14, e1007284 (2018).

Wang, H.H. i in. Programowanie komórek przez multipleksową inżynierię genomową i przyspieszoną ewolucję. Natura 460, 894–898 (2009).

Gutheil, WG, Kasimoglu, E. & Nicholson, PC Indukcja aktywności dehydrogenazy formaldehydowej zależnej od glutationu w Escherichia coli oraz Hemophilus influenza. Biochem. Biofizyka. Res. Komunia. 238, 693–696 (1997).

Kotrbova-Kozak, A., Kotrba, P., Inui, M., Sajdok, J. & Yukawa, H. Transkrypcja regulowana adhA gen koduje dehydrogenazę alkoholową niezbędną dla etanolu i n-utylizacja propanolu w Corynebacterium glutamicum R. Zał. Mikrobiol. Biotechnologia. 76, 1347–1356 (2007).

Wu, T.Y. i in. Charakterystyka i ewolucja niezależnej od aktywatora dehydrogenazy metanolowej z Cupriavidus necator N-1. Zał. Mikrobiol. Biotechnologia. 100, 4969–4983 (2016).

Roth, TB, Woolston, BM, Stephanopoulos, G. & Liu, DR Bacillus metanolicus dehydrogenaza metanolowa 2. Syntezator ACS. Biol. 8, 796–806 (2019).

Zhang, W. i in. Ekspresja, oczyszczanie i charakterystyka dehydrogenazy formaldehydowej z Pseudomonas aeruginosa. Białko Eksp. Purif. 92, 208–213 (2013).

Cotton, CA, Claassens, NJ, Benito-Vaquerizo, S. i Bar-Even, A. Odnawialny metanol i mrówczan jako surowce mikrobiologiczne. Aktualn. Opinia. Biotechnologia. 62, 168–180 (2020).

Thoma, S. i Schobert, M. Poprawiony Escherichia coli szczep dawcy do krycia dwurodzicielskiego. Mikrobiol FEMS. Łotysz. 294, 127–132 (2009).

Thomason, L.C., Costantino, N. i Court, D.L. E coli manipulacja genomem przez transdukcję P1. Aktualn. Prot. Mol. Biol. https://doi.org/10.1002/0471142727.mb0117s79 (2007).

Baba, T. i in. Budowa Escherichia coli K-12 w ramce, jednogenowe mutanty z nokautem: kolekcja Keio. Mol. Syst. Biol. 2, 2006–2008 (2006).

Nyerges, A. i in. Wysoce precyzyjna i przenośna metoda inżynierii genomu umożliwia porównanie efektów mutacyjnych w różnych gatunkach bakterii. Proc. Natl Acad. Nauka. USA 113, 2502–2507 (2016).

Zelcbuch, L. i in. Obejmowanie wielowymiarowej przestrzeni ekspresyjnej za pomocą kombinatoryki miejsca wiązania rybosomu. Kwasy nukleinowe Res. 41, e98 (2013).

Sambrook, J. & Russell, D.W. Klonowanie molekularne: podręcznik laboratoryjny Wydanie trzecie (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001).

Braatsch S., Helmark S., Kranz H., Koebmann B. & Jensen P.R. Escherichia coli szczepy z bibliotekami promotorów skonstruowanymi przez rekombinację Red/ET torują drogę do precyzyjnego dostrajania transkrypcji. Biotechniki 45, 335–337 (2008).

Giavalisco, P. i in. Adnotacja formuły elementarnej metabolitów polarnych i lipofilowych przy użyciu znakowania izotopowego 13 C, 15 N i 34 S w połączeniu ze spektrometrią mas o wysokiej rozdzielczości. Roślina J. 68, 364–376 (2011).

Liu, A., Feng, R. i Liang, B. Powierzchnia drobnoustrojów prezentująca dehydrogenazę mrówczanową i jej zastosowanie w optycznym wykrywaniu mrówczanu. Enzym. Mikrob. Technol. 91, 59–65 (2016).

Livak, KJ & Schmittgen, TD Analiza danych względnej ekspresji genów przy użyciu ilościowej PCR w czasie rzeczywistym i metody 2 - ΔΔCT. Metody 25, 402–408 (2001).

Zhou, K. i in. Nowe geny referencyjne do ilościowego określania odpowiedzi transkrypcyjnych Escherichia coli do nadekspresji białka metodą ilościowej PCR. BMC Mol. Biol. 12, 18 (2011).


Zawartość

Spektrum działania Edytuj

Kanamycyna jest wskazana w krótkotrwałym leczeniu zakażeń bakteryjnych wywołanych przez jeden lub więcej z następujących patogenów: E coli, odmieniec gatunki (zarówno indolo-dodatnie, jak i indolo-ujemne), Enterobacter aerogenes, Klebsiella pneumoniae, Serratia marcescens, oraz Acinetobacter gatunek. W przypadku poważnego zakażenia, gdy patogen jest nieznany, przed uzyskaniem wyników badania wrażliwości można podać początkowo wstrzyknięcie kanamycyny w połączeniu z lekiem z grupy penicyliny lub cefalosporyn.

Kanamycyna nie leczy infekcji wirusowych. [7]

Ciąża i karmienie piersią Edytuj

Kanamycyna należy do kategorii ciążowej D w Stanach Zjednoczonych. [7]

Kanamycyna przenika do mleka matki w niewielkich ilościach. Producent zaleca zatem, aby ludzie albo zaprzestali karmienia piersią, albo kanamycyny. Amerykańska Akademia Pediatrii uważa, że ​​​​kanamycyna jest odpowiednia w karmieniu piersią. [8]

Dzieci Edytuj

Kanamycynę należy stosować ostrożnie u noworodków ze względu na ryzyko zwiększonego stężenia leku wynikającego z niedojrzałej czynności nerek. [7]

Poważne skutki uboczne obejmują dzwonienie w uszach lub utratę słuchu, toksyczność dla nerek i reakcje alergiczne na lek. [9]

Inne skutki uboczne to: [7]

Kanamycyna działa poprzez zakłócanie syntezy białek. Wiąże się z podjednostką 30S rybosomu bakteryjnego. Powoduje to nieprawidłowe dopasowanie do mRNA i ostatecznie prowadzi do błędnego odczytania, co powoduje umieszczenie niewłaściwego aminokwasu w peptydzie. Prowadzi to do niefunkcjonalnych łańcuchów peptydowych. [10]

Kanamycyna jest mieszaniną trzech głównych składników: kanamycyny A, B i C. Kanamycyna A jest głównym składnikiem kanamycyny. [11] Efekty tych składników nie wydają się być szeroko badane jako pojedyncze związki, gdy są stosowane przeciwko komórkom prokariotycznym i eukariotycznym.

Podczas gdy główny produkt wytwarzany przez Streptomyces kanamyceticus oznacza kanamycynę A, wytwarzane są również dodatkowe produkty, w tym kanamycyna B, kanamycyna C, kanamycyna D i kanamycyna X.

Szlak biosyntezy kanamycyny można podzielić na dwie części. Pierwsza część jest wspólna dla kilku antybiotyków aminoglikozydowych, takich jak butirozyna i neomycyna. W nim biosyntetyzuje się unikalny aminocyklitol, 2-deoksystreptamina, z D-glukopiranozo-6-fosforan w czterech etapach. W tym momencie szlak kanamycynowy dzieli się na dwie gałęzie ze względu na rozwiązłość kolejnego enzymu, który może wykorzystywać dwa różne donory glikozylu – UDP-N-acetylo-α-D-glukozamina i UDP-α-D-glukoza. Jedno z odgałęzień tworzy kanamycynę C i kanamycynę B, podczas gdy drugie odgałęzienie tworzy kanamycynę D i kanamycynę X. Jednak zarówno kanamycyna B, jak i kanamycyna D mogą zostać przekształcone w kanamycynę A, więc oba odgałęzienia szlaku zbiegają się w kanamycynę A. [12] ]

Kanamycyna jest stosowana w biologii molekularnej jako środek selektywny najczęściej do izolacji bakterii (np. E coli), które wchłonęły geny (np. plazmidów) sprzężone z genem kodującym oporność na kanamycynę (głównie fosfotransferaza neomycyny II [NPT II/Neo]). Bakterie transformowane plazmidem zawierającym gen oporności na kanamycynę wysiewa się na płytkach agarowych zawierających kanamycynę (50-100 ug/ml) lub hoduje w pożywce zawierającej kanamycynę (50-100 ug/ml). Tylko bakterie, które z powodzeniem wchłonęły gen oporności na kanamycynę, stają się odporne i będą rosły w tych warunkach. W postaci proszku kanamycyna ma barwę białą do białawej i jest rozpuszczalna w wodzie (50 mg/ml).

Przynajmniej jeden taki gen, Atwbc19 [13] jest natywny dla gatunku rośliny, stosunkowo dużych rozmiarów, a jego zakodowane białko działa w sposób, który zmniejsza możliwość horyzontalnego transferu genów z rośliny do bakterii, może nie być w stanie dać odporności bakteriom, nawet jeśli nastąpi transfer genów.

Marker selekcyjny kanMX jest genem hybrydowym składającym się z bakteryjnej fosfotransferazy aminoglikozydowej (kan r z transpozonu Tn903) pod kontrolą silnego promotora TEF z Ashbya gossypii. [14] [15]


LB Agar kanamycyna-50, płytki

Jeśli jest dostępna dla danego produktu, zalecaną datę ponownego badania lub datę ważności można znaleźć na certyfikacie analizy.

Jak uzyskać informacje dotyczące partii lub Certyfikat analizy?

Dokument COA dotyczący konkretnej partii można znaleźć, wpisując numer partii powyżej w sekcji „Dokumenty”.

Jak znaleźć cenę i dostępność?

Ceny i dostępność naszych produktów można znaleźć na kilka sposobów. Po zalogowaniu się na naszej stronie internetowej cena i dostępność wyświetlane są na stronie szczegółów produktu. Aby otrzymać wycenę, możesz skontaktować się z dowolnym z naszych biur sprzedaży i obsługi klienta. Klienci z USA: 1-800-325-3010 lub zobacz numery lokalnych biur.

Jakie są informacje dotyczące wysyłki tego produktu przez Departament Transportu?

Informacje dotyczące transportu można znaleźć w sekcji 14 karty charakterystyki (MSDS) produktu. Aby uzyskać dostęp do informacji o wysyłce tego materiału, należy skorzystać z łącza na stronie szczegółów produktu.

Dlaczego płytki z agarem LB z antybiotykami mają tak krótką datę ważności?

Antybiotyki na płytkach z agarem LB nie są stabilne. Antybiotyk z czasem ulega degradacji, przez co jest nieskuteczny w selekcji transformowanych bakterii wyhodowanych na płytce. Z tego powodu zalecamy, aby płytki były używane jak najszybciej po ich otrzymaniu. W laboratoriach o niskim zużyciu płytki mogą szybko wygasnąć, więc mogą odnieść korzyści z wylewania własnych płytek przy użyciu proszku LB - Miller z formułą agarową (L3147).


Bibliografia

Gerdes K, Rasmussen PB, Molin S: Unikalny typ funkcji konserwacji plazmidu: postsegregacyjne zabijanie komórek wolnych od plazmidu. Proc Natl Acad Sci USA. 1986, 83: 3116-20. 10.1073/pnas.83.10.3116.

Handa N, Kobayashi I: Post-segregacyjne zabijanie przez kompleksy genów modyfikacji restrykcyjnej: obserwacje śmierci poszczególnych komórek. Biochimie. 1999, 81 (8): 931-938. 10.1016/S0300-9084(99)00201-1.

Degryse E: Stabilność układu gospodarz-wektor w oparciu o komplementację niezbędnego genu w Escherichia coli. J Biotechnol. 1991, 18: 29-39. 10.1016/0168-1656(91)90233-L.

Cranenburgh RM, Hanak JA, Williams SG, Sherratt DJ: Szczepy Escherichia coli, które umożliwiają selekcję i konserwację plazmidu bez antybiotyków przez miareczkowanie represora. Kwasy nukleinowe Res. 2001, 29: E26-10.1093/nar/29.5.e26.

Hagg P, de Pohl JW, Abdulkarim F, Isaksson LA: System gospodarz/plazmid, który nie jest zależny od antybiotyków i genów oporności na antybiotyki dla stabilnego utrzymania plazmidu w Escherichia coli. J Biotechnol. 2004, 111: 17-30. 10.1016/j.jbiotec.2004.03.010.

Fiedler M, Skerra A: komplementacja ProBA auksotroficznego szczepu E. coli poprawia stabilność plazmidu i wydajność ekspresji podczas wytwarzania w fermentorze rekombinowanego fragmentu przeciwciała. Gen. 2001, 274: 111-8. 10.1016/S0378-1119(01)00629-1.

Vidal L, Pinsach J, Striedner G, Caminal G, Ferrer P: Opracowanie systemu selekcji plazmidów bez antybiotyków w oparciu o auksotrofię glicyny dla nadprodukcji rekombinowanego białka w Escherichia coli. J Biotechnol. 2008, 134: 127-36. 10.1016/j.jbiotec.2008.01.011.

Pfaffenzeller I, Mairhofer J, Striedner G, Bayer K, Grabherr R: Używanie RNA I pochodzącego z ColE1 do tłumienia genu kodowanego przez bakterie: implikacja dla nowego systemu uzależnienia od plazmidu. Biotechnol J. 2006, 1: 675-81. 10.1002/biot.200600017.

Mairhofer J, Pfaffenzeller I, Merz D, Grabherr R: Nowy system selekcji plazmidów bez antybiotyków: postęp w bezpiecznej i skutecznej terapii DNA. Biotechnol J. 2008, 3: 83-9. 10.1002/biot.200700141.

Luke J, Carnes AE, Hodgson CP, Williams JA: Ulepszone wolne od antybiotyków wektory szczepionkowe DNA wykorzystujące nowy system selekcji plazmidów oparty na RNA. Szczepionka. 2009, 27: 6454-6459. 10.1016/j.szczepionka.2009.06.017.

Goh S, Good L: Selekcja plazmidu w Escherichia coli przy użyciu endogennego niezbędnego markera genowego. Biotechnologia BMC. 2008, 11: 61-10.1186/1472-6750-8-61. 10.1186/1472-6750-8-61.

Soubrier F, Cameron B, Manse B, Somarriba S, Dubertret C, Jaslin G, Jung G, Caer CL, Dang D, Mouvault JM, Scherman D, Mayaux JF, Crouzet J: pCOR: nowy projekt wektorów plazmidowych dla genu niewirusowego terapia. Gene Ther. 1999, 6: 1482-8. 10.1038/sj.gt.3300968.

Szpirer CY, Milinkovitch MC: System stabilizacji oddzielnych składników do produkcji białka i DNA bez użycia antybiotyków. Biotechniki. 2005, 38: 775-81. 10.2144/05385RR02.

Palmeros B, Wild J, Szybalski W, Le Borgne S, Hernández-Chávez G, Gosset G, Valle F, Bolivar F: A family of removable cassettes designed to obtain antibiotic-resistance-free genomic modifications of Escherichia coli and other bacteria. Gene. 2000, 247: 255-64. 10.1016/S0378-1119(00)00075-5.

Datsenko KA, Wanner BL: One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proc Natl Acad Sci USA. 2000, 97: 6640-5. 10.1073/pnas.120163297.

Mizoguchi H, Tanaka-Masuda K, Mori H: A simple method for multiple modification of the Escherichia coli K-12 chromosome. Biosci Biotechnol Biochem. 2007, 71: 2905-11. 10.1271/bbb.70274.

Summers DK, Sherratt DJ: Multimerization of high copy number plasmids causes instability: CoIE1 encodes a determinant essential for plasmid monomerization and stability. Komórka. 1984, 36: 1097-103. 10.1016/0092-8674(84)90060-6.

Balding C, Blaby I, Summers DA: Mutational analysis of the ColE1-encoded cell cycle regulator Rcd confirms its role in plasmid stability. Plasmid. 2006, 56: 68-73. 10.1016/j.plasmid.2005.12.001.

Stirling CJ, Stewart G, Sherratt DJ: Multicopy plasmid stability in Escherichia coli requires host-encoded functions that lead to plasmid site-specific recombination. Mol Gen Genet. 1988, 214: 80-4. 10.1007/BF00340183.


Isolation of Microorganisms from Food Materials

Nutrient agar plates (prepared by students)

Normal saline (0.85%% sodium chloride solution)

Sterile L-shaped spreaders

Food samples used were minced meat (10 g in 90 mL sterile saline), milk (10 mL in 90 mL sterile saline), and soft-rot vegetables (10 g in 90 mL sterile saline). They were blended in saline with a Waring blender, giving 10 −−1 dilution of the original concentration.

Experiments carried out within the 5 days.

Day . Experiments .
1 Preparation of culture media (agar plates)
Isolation of microorganisms from food samples by serial dilution and plating
2 Enumeration of microorganisms isolated from food
Pure culture techniques (streak plate method)
Antimicrobial susceptibility test by disk diffusion method
Minimum inhibitory concentration (MIC) of antibiotics
3 Gram staining of bacterial isolates and observation of bacterial morphology
Streaking of isolates on selective and differential media
Oxidase test for bacterial isolates
Read results of disk diffusion and MIC tests
Minimum bactericidal concentration (MBC) of antibiotics
4 Assessment of growth of isolates on selective and differential media
Identification of bacterial isolates using the API20E system
Read results of MBC test
5 Read results of API20E test strip
Day . Experiments .
1 Preparation of culture media (agar plates)
Isolation of microorganisms from food samples by serial dilution and plating
2 Enumeration of microorganisms isolated from food
Pure culture techniques (streak plate method)
Antimicrobial susceptibility test by disk diffusion method
Minimum inhibitory concentration (MIC) of antibiotics
3 Gram staining of bacterial isolates and observation of bacterial morphology
Streaking of isolates on selective and differential media
Oxidase test for bacterial isolates
Read results of disk diffusion and MIC tests
Minimum bactericidal concentration (MBC) of antibiotics
4 Assessment of growth of isolates on selective and differential media
Identification of bacterial isolates using the API20E system
Read results of MBC test
5 Read results of API20E test strip

Procedura

The students did serial tenfold dilutions and plating in groups of three. Using a sterile 10-mL pipette, 9 mL of saline was placed in each of four sterile tubes labeled 10 −−2 , 10 −−3 , 10 −−4 , and 10 −−5 . Using a sterile micropipette tip, 1 mL of the 10 −−1 food suspension was transferred into 9 mL of saline to give a 10 −−2 dilution and mixed well. Serial dilution was carried out until 10 −−5 . Then, 0.1 mL each of the 10 −−4 and 10 −−5 dilutions were plated on nutrient agar plates in triplicates. The plates were incubated in an inverted position in the incubator at 37°°C overnight.

Wyniki

The following day, the students counted the number of colonies. The number of colony-forming units per milliliter was calculated as follows: mean number of colonies per plate ×× dilution factor ×× 10. Plates containing unknown bacteria remained sealed during the counting process, and the bacteria were not subcultured further. They were autoclaved after counting was done.


The Effects Of Antibiotics On Bacterial Growth

The Effects of Antibiotics on bacterial growth Biology II 1996 Bacteria are the most common and ancient microorganisms on earth. Most bacteria are microscopic, measuring 1 micron in length. However, colonies of bacteria grown in a laboratory petri dish can be seen with the unaided eye. There are many divisions and classifications of bacteria that assist in identifying them. The first two types of bacteria are. Both groups have common ancestors dating to more than 3 billion years ago.

Zastrzeżenie: Ta praca została przesłana przez studenta. To nie jest przykład pracy napisanej przez profesjonalnych pisarzy akademickich. Tutaj możesz zamówić profesjonalną pracę. (Znajdź cenę odpowiadającą Twoim wymaganiom)

* Zaoszczędź 10% na pierwszym zamówieniu, kod promocyjny rabatu „096K2”

Archaebacteria live in environments where, because of the high temperature, no other life can grow. These environments include hot springs and areas of volcanic activity. They contain lipids but lack certain chemicals in their cell wall. Eu bacteria are all other bacteria. Most of them, i. mi.

they use the sun’s energy as food through the process of photosynthesis. Another classification of bacteria is according to their need of oxygen to live. Those who do require oxygen to live are considered aerobes. The bacteria who don’t use oxygen to live are known as anaerobes. The shape of specific bacteria provides for the next step in the identification process. Spherical bacteria are called cocci the bacteria that have a rod like shape are known as bacilli corkscrew shaped bacteria are spirilla and filamentous is the term for bacteria with a threadlike appearance.

The Essay on Bacteria Live Survive Cell Food

Bacteria live almost everywhere, even where other forms of life can? t. The only places? where they can? t survive is in sanitized places. Some bacteria need oxygen to survive, and others don? t need any. Also some can survive with both, but some can? t survive with oxygen. They protect themselves by forming a thick cell membrane inside the old one. Bacteria get food by feeding off of other tiny .

Hans Christian Joachim Gram, a Danish microbiologist, developed a method for distinguishing bacteria by their different reaction to a stain. The process of applying Gram’s stain is as follows: the bacteria are stained with a violet dye and treated with Gram’s solution (1 part iodine, 2 parts potassium iodide, and 300 parts water).

Ethyl alcohol is then applied to the medium the bacteria will either preserve the blue color of the original dye or they will obtain a red hue. The blue colored bacteria are gram-positive the red bacteria are identified as gram-negative.

Bacteria contain DNA (acid) just like all cells. However, in bacteria the DNA is arranged in a circular fashion rather than in strands. Bacteria also contain ribosomes which, like in eukaryotic cells, provide for protein synthesis. In order for a bacterium to attach itself to a surface, it requires the aid of pili, or hairlike growths. Bacteria, just like sperm cells, have flagella which assist in movement. But, sperm cells only have one flagellum, whereas bacteria contain flagella at several locations throughout their body surface.

Although most bacteria are not harmful, a small fraction of them are responsible for many diseases. These bacterial pathogens have affected humans throughout history. The “plague”, an infamous disease caused by bacteria, has killed millions of people. Also, such a disease as tuberculosis, a disease responsible for the lives of many, is caused by bacterial pathogens ingested into the body. Bacteria affect everyone in their daily life because they are found nearly everywhere. They are found in the air, in food, in living things, in non-living things, and on every imaginable surface.

Escherichia coli is a disease causing gram-negative bacillus. These bacteria are commonly found within the intestines of humans as well as other vertebrates. This widely spread bacteria is known to cause urinary tract infections as well as diarrhea. Microcococcus Luteus are gram-positive parasitic spherical bacteria which usually grows in grape like clusters. This species is commonly found in milk and dairy products as well as on dust particles. Bacillus Cereus are a spore forming type of bacteria.

They are gram-positive and contain rods. Due to the fact that this bacteria is known to survive cooking, it is a common cause of food poisoning and diarrhea. Seratia Marscens a usually anaerobic bacteria which contains gram-negative rods. This bacteria feeds on decaying plant and animal material.

The Essay on Sickle Cell Anemia Disease Blood Cells

BY BETTY J ALLEN OUTLINE Thesis statement: Sickle Cell Disease is an inherited disease that affects the red blood cells. This disease can be treated so a person can live a long health life. 1. Sickle Cell Disease a. What is sickle cell disease? b. Whom does this disease affect? C. What race and geographic region do they belong to? D. C. Causes of sickle cell disease. mi. Signs and symptoms and how .

S. are found in water, soil, milk, foods, and certain insects. In spite of the fact that bacteria are harmful to the body, certain measures can be taken in order to inhibit their growth and reproduction. The most common form of bacteria fighting medicines are antibiotics. Antibiotics carry out the action which their Greek origin suggests: anti meaning against, and bios meaning life. In the early parts of the 20 th century, a German chemist, Paul Ehrlich began experimentation using organic compounds to combat harmful organisms without causing damage to the host.

The results of his experimentation began the study and use of antibiotics to fight bacteria. Antibiotics are classified in various ways. They can be arranged according to the specific action it has on the cell. For example, certain antibiotics attack the cell wall, others concentrate on the cell membrane, but most obstruct protein synthesis. Another form of indexing antibiotics is by their actual chemical structure. Practically all antibiotics deal with the obstruction of synthesis of the cell wall, proteins, or nucleic acids.

Some antibacterials interfere with the messenger RNA, consequently mixing up the bacterial genetic code. Penicillins act by inhibiting the formation of a cell wall. Thisantibiotic works most effectively against gram-positive streptococci, staphylococci (e. g. Micrococcus Luteus) as well as certain gram-negative bacteria. Penicillin is usually prescribed to treat syphilis, gonorrhea, meningitis, and anthrax.

Tetracycline inhibits protein synthesis in pathogenic organism. Thisantibiotic is obtained from the culture of Streptomyces. Streptomycin an antibiotic agent which is obtained from Streptomycesgriseus. This antibiotic acts by limiting normal protein synthesis.

Streptomycin is effective against E. Coli, gram-negative bacilli, as well as many cocci. Neomycin an antibiotic derived from a strain of Streptomyces. Neomycin effectively destroys a wide range of bacteria. Kanamycin an antibiotic substance derived from Streptomyces. Its antibacterial action is very similar to that of neomycin.

The Essay on Cause and effect of cell phone

Cell phone is one of great devices that improve the lives of the society. Cell phone provides some services of access to communicate to people in worldwide/in the world. Technology is used by cell phone developer is making rapid advancement. Nowadays, obviously, there will be more and more the people in the society are using cell phone in their lives. In 2012 year, the number of cell phone sold in .

Kanamycin works against many aerobic gram-positive and gram-negative bacteria, especially E. coli. Protracted use may result in auditory as well as other damages. Erythromycin is an antibiotic produced by a strain of Streptomyceserythreaus. This antibiotic works by inhibiting protein synthesis but not nucleic synthesis. Erythromycin has inhibitory effects on gram-negative cocci as well as some gram-positive bacteria.

Chloramphenicol is a clinically useful antibiotic in combating serious infections caused by certain bacteria in place of potentially hazardous means of solving the problem. In lab tests, it has been shown that this medicine stopped bacterial reproduction in a wide range of both gram-positive and gram-negative bacteria. The inhibition of cell reproduction caused by Chloramphenicol takes place through interference with protein synthesis. An experiment was conducted in order to determine which antibiotics are most effective in inhibiting bacterial growth. First, the different bacteria were placed on agar inside petri dishes. Then, antibiotic discs were placed intothe dishes.

Each bacteria was exposed to every one of the antibiotics listed above. The bacteria used in the experiment were: Bacillus Cerus, EscerichiaColi, Seratia Marscens, and Micrococcus Luteus. After a 24 hour incubation period, the results were measured. In order to determine which antibiotic had the most effect their zones of inhibition we rerecorded.

The zone of inhibition refers to the distance from the disc to the outermost section around the disc where no bacterial growth was present. There sults can be seen on the graph and data chart. The following is a table showing the different zones of inhibition of each antibiotic in the bacteria culture: Tetracycline Chloramphenicol Kanamycin Neomycin Penicillin Streptomycin Erythromycin B. Cerus 5. 5 9 56.

6 1 7 13 E. Coli 74. 2 5. 5 4.

5 no effect 4. 6 no effectS. Marscens no effect no effect 4. 5 4 no effect 3 no effect. Luteus 2322 10 11 23. 5 11.

5 19 After analysis of the data obtained it is obvious that each antibiotic had a distinct effect on the growth of the different bacteria. The results of this experiment are very important, since they teach of how each bacteria reacts to different antibiotics. This is very valuable because it is the information which assists physicians in prescribing certain medications to cure diseases caused by bacteria. Bibliography 1) En cart Encyclopedia 1994, CD-ROM.

The Essay on Bacteria Classification By Gram Staining

Bacteria Classification By Gram Staining THE AMERICAN UNIVERSITY IN CAIRO BIOLOGY DEPARTMENT SCIENCE 453: BIOLOGY FOR ENGINEERS REPORT No. 1 Presented By: Karim A. Zak lama 92-1509 Sci. 453-01 24/2/96 Objective: To test a sample of laboratory prepared bacteria and categorise it according to Christians gram positive and gram negative classes and also by viewing it under a high powered microscope .

2) McGraw-Hill Encyclopedia of Science and Technology, 1992. 3) Physicians’ Desk Reference, 1996.

Podobne dokumenty

The Effects On Population Size And Growth In Australia

. on population decline, as the Australias population growth rate remained positive. Table 3 Population Change in Australia, 2000-01 . conducted to examine and assess the effects on population size and growth in Australia. According to Australian Bureau .

Bacterial Dna Antibiotics Bacteria Antibiotic

. growth of bacteria. They act by interfering with the nucleic acid synthesis, peptidoglycan synthesis, protein synthesis, or the membrane integrity within the bacterial cell. [2] The prokaryotic bacterial cell .

Negative And Positive Aspects Of The Development Of Agriculture

Discuss the negative and positive aspects of the development . by early human communities. The demands and effects of practicing agriculture as a means of . spaces. The problem closely related to population growth and to the difficulty of maintaining a .

Negative Liberty Positive Freedom Coercion

. in fact irreconcilable, so much so that positive liberty threatens negative liberty, leading to the possibility of despotism . intrudes and despots of one kind and another." Negative and positive liberties are not mutually exclusive concepts. The real .

Negative and Positive Impact of Mis

. activities run in the organization it face some positive and negative impact. Here in this assignment try to focuse . some of this negative and positive impact of MIS in Organization. Introduction Information systems .

Side Effects Antibiotics Bacteria Antibiotic

. the bacteria. It is believed that antibiotics interfere with the surface of bacteria cells, . in life-threatening diseases where the negative effects are the lesser danger. Preliminary . (a substance used for the growth of microorganisms) such as corn .


Purification and Digestion of Plasmid (Vector) DNA

Susan Carson , . D. Scott Witherow , in Molecular Biology Techniques (Third Edition) , 2012

Principles of Gene Expression

In order to understand how expression vectors function, it is important to recall the Central Dogma of Molecular Biology ( Figure 2.1 ). For a gene to be expressed, it must first be transcribed into messenger RNA (mRNA), and then translated into protein. In the simplest example, RNA polymerase binds to the promoter of a gene and then proceeds with transcription, producing mRNA. Transcription ends at the terminator sequence.

Fig. 2.1 . Central Dogma of Molecular Biology. DNA is transcribed into mRNA, which in turn is translated into protein. RNA polymerase binds to the promoter of a gene on DNA and proceeds with transcription, producing a new mRNA. The ribosome and tRNA work together to translate the nascent mRNA into protein.

The ribosome then binds the mRNA at the ribosome binding site (RBS) and the ribosome moves along the mRNA. As the ribosome moves along the mRNA, transfer RNA (tRNA) is responsible for decoding the mRNA and specifically depositing an amino acid residue on the nascent polypeptide chain. The translational start codon, which is usually encoded by AUG (ATG on the DNA), encodes the first amino acid (usually methionine), and the translation stop codon (TAA, TAG or TGA) ends translation.

Wektory wyrażenia

The expression vector you will use for your project is pET-41a ( Figure 2.2 ). This expression vector utilizes a kanamycin resistance gene as a selectable marker and the glutathione-S-transferase gene ( gst) as a fusion tag. The multiple cloning site is downstream (3′) of the gst gene and there is no stop codon or termination signal following the gst gene. Therefore, when our gene of interest (egfp) is cloned into the multiple cloning site it will be expressed as a fusion protein with gst, resulting in expression of the fusion protein, GST::EGFP. You will learn more about how creating this fusion protein will aid in the purification of the EGFP protein later in the semester.

Fig. 2.2 . Salient features of pET-41a.

The expression of the gst gene, and consequently the fusion gene in your future construct, is under the control of the T7 promoter and is inducible using isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside (IPTG). In nature, the promoter is induced by lactose, and IPTG mimics lactose with regard to the induction properties, but is not cleaved by the E coli enzyme β-galactosidase. Inducibility is due to the fact that pET-41a uses two components of the gumilaka operon, the gumilaka operator i gumilakaI gene, to regulate transcription. In this vector, the gumilaka operator is located adjacent to the T7 promoter. gumilakaI encodes a repressor and is constitutively expressed, so the repressor protein LacI is always present. LacI binds to the gumilaka operator in the absence of inducer and prohibits RNA polymerase from initiating transcription from the T7 promoter. When the inducer molecule IPTG is added, it interacts with LacI in such a way that LacI will no longer bind to the gumilaka operator, and thus transcription by the T7 RNA polymerase proceeds. This process is called derepression of the promoter ( Figure 2.3 ).

Fig. 2.3 . Promoter repression by LacI and derepression by IPTG. (A) The repressed state of the promoter. (B) The derepressed state of the promoter due to the inducer molecule, IPTG.



Uwagi:

  1. Atreides

    Robić błędy. Spróbujmy o tym omówić. Napisz do mnie w PM.

  2. Zulugore

    Ohhh, będę wciskać nowy talent

  3. Tor

    Przepraszam, że nie jestem w stanie pomóc. Mam nadzieję, że tu pomogą.

  4. Courtenay

    Pytanie jest inną odpowiedzią

  5. Fortune

    Przepraszam za przerwanie.



Napisać wiadomość